Бакалавр
Дипломные и курсовые на заказ

Морфологические изменения матки и ее лимфатического аппарата после родов с рубцом миометрия (экспериментальное исследование)

Диссертация: Морфологические изменения матки и ее лимфатического аппарата после родов с рубцом миометрия (экспериментальное исследование)
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Полученные в работе данные о характере структурных изменений матки с поперечным рубцом во время беременности и естественной родовой деятельности дополняют представления об особенностях регенерации гладко-мышечных клеток. В практической деятельности при установлении показаний и противопоказаний к родам с рубцом на матке, при изучении состоятельности рубца необходимо исследовать не только рубец… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Структурная организация матки
    • 1. 2. Рубец на матке после кесарева сечения
    • 1. 3. Изменения лимфоидных органов при беременности
  • Глава 2. Материал и методы исследования
    • 2. 1. Группы животных и сроки забора материала
    • 2. 2. Моделирование рубца миометрия
    • 2. 3. Объекты исследования
    • 2. 4. Подготовка материала к изучению методами световой микроскопии
    • 2. 5. Статистическая обработка полученных данных
  • Глава 3. Изменения тканей матки крыс после родов с рубцом на матке и без рубца
    • 3. 1. Собственная пластинка слизистой оболочки матки
      • 3. 1. 1. Гемомикроциркуляция и лимфоток в глубоких слоях собственной пластинки слизистой оболочки матки
      • 3. 1. 2. Цитограмма тканевых лейкоцитов глубоких слоев собственной пластинки слизистой оболочки матки
    • 3. 2. Миометрий
      • 3. 2. 1. Гемомикроциркуляция и лимфоток в миометрии
      • 3. 2. 2. Цитограмма тканевых лейкоцитов миометрия
    • 3. 3. Ткань рубца на матке
      • 3. 3. 1. Гемомикроциркуляция и лимфоток в тканях рубца на матке
      • 3. 3. 2. Цитограмма тканевых лейкоцитов в рубце на матке
    • 3. 4. Ткани на границе рубца на матке и миометрия
      • 3. 4. 1. Гемомикроциркуляция и лимфоток в тканях на границе рубца на матке и миометрия
      • 3. 4. 2. Цитограмма тканевых лейкоцитов на границе рубца на матке и миометрия
  • Глава 4. Изменения подвздошных лимфатических узлов крыс после родов с рубцом на матке и без рубца
    • 4. 1. Структурная организация подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 2. Цитоархитектоника коркового плато подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 3. Цитоархитектоника паракортикальной зоны подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 4. Цитоархитектоника лимфоидных фолликулов без герминативных центров подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 5. Цитоархитектоника мантийной зоны лимфоидных фолликулов с герминативными центрами подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 6. Цитоархитектоника герминативных центров лимфоидных фолликулов подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 7. Цитоархитектоника мякотных тяжей подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 8. Цитограмма клеток в мозговых синусах подвздошных лимфатических узлов

Морфологические изменения матки и ее лимфатического аппарата после родов с рубцом миометрия (экспериментальное исследование) (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

:

Преимущества, получаемые при естественных родах после кесарева сечения значительно превышают риски повторного кесарева сечения (Phelan J.P. et al., 1987; Nielsen T.F. et al., 1989; Rachagan S.P. et al., 1991; Berger D. et al., 1991; Mozurkewich E.L., Hutton E.K., 2000; Bretelle F. et al., 2001; Ben A.N. et al., 2003).

И для родов и для повторного кесарева сечения при наличии кесарева сечения в анамнезе есть индивидуальные показания для каждой женщины (Rudigoz R.C., Chardon С., 1990; Gaucherand P., 1990; Mor-Yosef S. et al., 1990; Picaud A. et al., 1990; Pridjian G., 1992; Zabransky F., 1994; Roberts R.G. et al., 1997; Tomialovvicz M. et al., 2000; Ben A.N. et al., 2003). Причем, показания к повторному кесареву сечению из-за рубца на матке постоянно сокращаются (Boisselicr P. et al., 1987; Yilmazturk A., Schluter W., 1991; Kaplan В. et al., 1994; I-iaddad S., Maria В., 1996).

О родах естественным путем, в том числе и стимулированных, после предыдущего кесарева сечения имеется много сообщений (Bcniila J.L. et al., 1995; Zabransky F., 1995; Phelan J.P. et al., 1998; Vause S., Macintosh M., 1999; Rozenberg P. et al., 1996, 1997, 1999; Appleton В. et al., 2000; Shimonovitz S. et al., 2000; Wasef W.R., 2000; Scioscia M. et al., 2005). По некоторым данным, вагинальное родоразрешение у таких рожениц удается до 90% или даже более, частота разрывов матки при естественных родах у этой категории пациентов незначительно выше или не отличается от групп женщин без рубцов на матке (Zorlu C.G. et al., 1996; Dubuisson J.B. et al., 1996; Martin J.N. et al., 1997; Abbassi II. et al., 1998; Bretelle F. et al., 2000; Yap O.W. et al., 2001; Ben A.N. et al., 2003; Ofir K. et al., 2004; Hassan A., 2005).

Для предупреждения разрывов матки при последующих беременностях и родах предлагают во время операции кесарева сечения ушивать орган однорядным швом, при этом рубец получается значительно уже и, следовательно, меньше вероятность ишемии краев раны, присоединения инфекции, образования гематомы и, впоследствии, разрыва по рубцу (Kleissl Н.Р. et al., 1975; Kiss D. et al., 1978; Tischendorf D., 1987; Lai K., Tsomo P., 1988; Muller R. et al., 1990), но есть и прямо противоположные данные о меньшем количестве разрывов матки в родах после ушивания разреза двухрядным швом (Pruett К.М. et al., 1988). Качество шва (continuous, evertedcontinuous, invertedinterrupted, evertedinterrupted, inverted) не влияет на формирование рубца (Dunnihoo D.R. et al., 1989).

Достаточно много исследователей гоучали морфологическими, клиническими и другими методами особенности формирования рубца матки у беременных женщин и экспериментальных животных (кролики) после исполнения кесарева сечения различными методами (Ruiz-Velasco V. et al., 1968; Dellenbach P. et al., 1968; Martella E. et al., 1968; Клименко 3.C., Гитман Г. И., 1969; Бульбаков КС., Басин Б. Л., 1969; Wojdecki J., Grynsztajn A., 1970; Pro-chorovv M., Lazar W., 1971; Waniorek A., 1972a, 19 726- Горанов M., Попович Д., 1978a, 19 786- Van Vugt P.J., 1979; Kanadys W., 1979; Макаров И. О. и др., 1989; Лебедев В. А. и др., 1991).

Количество соединительной ткани (фиброзной) в рубце матки обычно достигает 35,7% (Mejia R et al., 1989). По данньш гистероскопии через 1 год после кесарева сечения полное восстановление мышечной ткани наблюдали в 18 случаях (го 32), частичное замещение тканей матки соединительной тканью — у 8 пациентов и полное — у 6 (Мареева Л.С. и др., 1989). О нескольких типах соединительной ткани в рубце на матке сообщают M. Fukuda с соавт. (1992).

Z.Sestanovic и соавт. (2003) гоучали влияние различной техники ушивания матки (однорядный прерывистый, однорядный непрерывный, двухрядный непрерывный, двухрядный прерывистый швы) разным шовным материалом (кетгут, дексон и викрил) на процессы заживления матки после нижней поперечной гистеротомии во время кесарева сечения. Наилучшие результаты были обнаружены после ушивания матки однорядным прерывистым швом с использованием викрила или дексопа. Наихудшие — после применения двухрядного непрерывного или прерывистого кетгутового шва. Подобные клинические результаты были получены и другими исследователями (Cohain J.S., 2004).

В оценке состоятельности рубцов матки после кесарева сечения немалую роль играет изучение сосудов и нервов этих рубцов (Якутина М.Ф., 1968). Степень васкуляризации, связь рубца с мышечной тканыо, отсутствие воспалительных тменений могут служить прюнаком состоятельности рубца (Kiss D. et al., 1978; Лазаров Л., Стратиев С., 1993). Следует отметить, что даже минимальная воспалительная реакция приводит к рассасыванию колла-геновых волокон соединительной ткани и, таким образом, приводит к ослаблению рубца на матке после кесарева сечения (Шехтер А.Б., Милованова З. П., 1975).

В тимусе экспериментальных животных после беременности можно отмстить изменения, сходные с феноменом «возрастной инволюцию). Во время беременности происходит блокирование процессов миграции лимфоцитов из крови в лимфат1П1ескне узлы и отмечены сходные направления реакции подвздошных и мезентериальных лимфатических узлов. В ранние периоды отмечено увеличение численности лимфобластов, макрофагов и делящихся клеток в фолликулах, в это время корковое плато относительно стабильно. В пара-кортикальной зоне тех и других узлов уменьшается число малых лимфоцитов и ретикулярных клеток, в мякотных тяжах возрастает количество бластов и незрелых плазмоцитов. По мере продолжения беременности в паракортексе прогрессивно увеличивается численность лимфобластов и больших лимфоцитов, в мякотных тяжах доминируют зрелые плазматические клетки. К концу беременности во всех отделах лимфатических узлов возрастает число ретикулярных клеток (Hetherington С.М., Humber D.P., 1977; Ansell J.D. et al., 1978; Sasaki К., Ito T., 1980; Newport A., Carter J., 1983; Carter J. et al., 1983; Carter J., Dresser D.W., 1983; Carter J., 1984; Кульбах O.C., 1984; Долгова M.A. и др., 1985; Георгиева Р., Ковачев К., 1986; Sulila P. et al., 1988; Sulila P., Mattsson.

R., 1990; Dresser D.W., 1991; Bernadotte F., Mattsson R., 1992; Hegde U.C., Na-inan R., 1998).

В регионарных лимфатических узлах матки крыс при беременности возрастает относительный объем паракортикальной зоны, особенно в период с 13 по 17 день. Отек, вазодилятация и нейтрофильная инфильтрация были отмечены с 7 по 11 день. Эндотелий посткапиллярных вен был гипертрофирован, содержал множество мигрирующих лимфоцитов, которые были аккумулированы вокруг сосудов, объем самого микроциркуляторного русла был увеличен. Начиная с 17 суток в паракортикальной зоне появлялись плазмоб-ласты, плазмошггы, клетки Мота, моноциты и макрофаги. В B-зонах и мозговых синусах увеличивалось число бластов, нлазмоцитов, моноцитов, макрофагов и делящихся клеток, сокращался процент ретикулярных клеток. При изучении ультраструктуры кровеносных капилляров подвздошных лимфатических узлов беременных крыс было найдено возрастание просвета этих капилляров, степени фенестрации артериальной и венозной частей, увеличение объема промежуточных синусов, числа микро-пинощггозных везикул и активация формирования траисэндотелнальных каналов (Бородин Ю.И. и др., 1982, 1986, 1987 В, 1988; Склянова H.A. и др., 1987).

Таким образом, несмотря на большой объем литературных данных, посвященных структуре рубца на матке после кесарева сечения у оперированных женщин или экспериментальных животных, практически полностью отсутствуют результаты исследования рубцов миометрия после вагинальных родов. Кроме того, нет сведений об изменениях регионарных лимфатических узлов в достаточно отдаленные сроки после родов, а также после вагинального родоразрешения после предшествующей операции кесарева сечения.

Цель исследования — изучить морфологические изменения матки, рубца миометрия и подвздошных лимфатических узлов крыс после естественных родов с рубцом на матке.

Задачи исследования:

1. Изучить изменения микрогемоциркуляции, лимфотока и цитограммы тканевых лейкоцитов различных отделов стенки матки крыс после естественных родов в условиях наличия рубца миометрия.

2. Изучить микроциркуляцию и состав тканевых лейкоцитов в рубце миометрия после вагинальных родов животных с рубцом на матке.

3. Установить изменения структуры и клеточного состава различных зон подвздошных лимфатических узлов крыс после родов с рубцом миометрия.

Научная нопшна;

Впервые создана модель поперечного рубца на матке у мелких экспериментальных животных, позволяющая изучать особенности течения беременности и родов, возникновения и развития осложнений в таких условиях.

Впервые в эксперименте продемонстрирована возможность беременности и вагинального родоразрешения у крыс в условиях наличия рубца миометрия.

Впервые показано, что через 1,5−2 месяца после родов отсутствуют достоверные изменения гемомикроцикуляции и лимфотока в глубоких слоях эндометрия, миометрии и рубце миометрия у крыс в условиях моделирования рубца миометрия, но сравнению с интактными крысами, нерожавшими с рубцом на матке и животными, рожавшими после лапаротомии.

Впервые установлено, что у крыс после родов с рубцом на матке в миометрии увеличено относительное и абсолютное число эритроцитов, по сравнению с нерожавшими животными.

Впервые выявлено, что при беременности и родовой деятельности в условиях наличия рубца миометрия происходит повреждение не самого рубца, а пограничной зоны вокруг рубца, в которой гладкомышечные клетки соединяются с миометрием. На это указывают старые кровоизлияния и явления лимфостаза, большее число лимфоцитов, нейтрофилов, моноцитов, макрофагов и эритроцитов на границе рубца и миометрия у животных после родов.

Впервые показано, что в подвздошных лимфатических узлах животных после родов увеличена объемная плотность соединительной ткани, расширены мякотные тяжи и мозговые синусы, при этом уменьшена относительная площадь паракортекса. Данные изменения, скорее всего, связаны с физиологическими изменениями иммунитета и лимфотока в результате беременности и родов. У животных с рубцом на матке, по сравнению с ложноперированны-ми крысами, не выявлены специфические изменения подвздошных лимфатических узлов в течение беременности и родов.

Впервые продемонстрировано, что во всех зонах подвздошных лимфатических узлов животных после родов возрастает количество макрофагов, нлазмоцитов и нежизнеспособных клеток, что связано с антигенной стимуляцией во время беременности и травмой при лапаротомии во время моделирования рубца на матке. В мозговых синусах данных органов после родов с рубцом на матке возрастает количество эритроцитов, что обусловлено гемор-рагиями в пограничной к рубцу зоне.

Теоретическое и практическое значение:

Полученные в работе данные о характере структурных изменений матки с поперечным рубцом во время беременности и естественной родовой деятельности дополняют представления об особенностях регенерации гладко-мышечных клеток. В практической деятельности при установлении показаний и противопоказаний к родам с рубцом на матке, при изучении состоятельности рубца необходимо исследовать не только рубец, но и пограничную с миомстрием зону, в которой в результате сохраняющейся воспалительной реакции нарушены плотные соединения гладкомышечных клеток миометрия с соединительнотканным рубцом, вследствие чего возможны разрывы матки. Однократная беременность и естественные роды с рубцом на матке допустимы. Вопрос о допустимости повторного вагинального родоразрешения должен решаться индивидуально, на основании изучения состояния рубца на матке и пограничной с миомстрием зоны. Противопоказанием к повторному естественному родоразрешению могут быть полости с жидкостью и геморрагии в рубце миомертия и пограничной зоны, обнаруживаемые по данным УЗИ или других инструментальных исследований.

Внедрение результатов исследования в практику:

Результаты исследования внедрены в практику научно-исследовательской работы кафедры акушерства и гинекологии лечебного факультета Новосибирской государственной медицинской академии Росздрава, группы патоморфологии лаборатории оперативной лимфологии клинического отдела ГУ НИИ клинической н экспериментальной лимфологии СО РАМН и лечебную работу Муниципального городского перинатального центра г. Новосибирска.

На защиту выносятся следующие основные положения:

1. У крыс с поперечным рубцом тела матки возможно проведение вагинальных родов.

2. В процессе беременности и естественной родовой деятельности у животных с рубцом на матке происходит повреждение тканей не самого рубца, а пограничной с миометрием зоны.

3. В подвздошных лимфатических узлах животных после родов возрастает объемная плотность соединительной ткани, происходит расширение мя-котных тяжей и мозговых синусов при уменьшении относительной площади паракортекса. Во всех зонах лимфатических узлов рожавших крыс возрастает количество макрофагов, плазмоцитов и нежшнеспособных клеток, после родов с рубцом на матке в системе мозговых синусов возрастает количество эритроцитов.

Апробация материалов диссертации:

Основные положения диссертации доложены на Ежегодных конкурс-конференциях студентов и молодых ученых (Новосибирск, 2003, 2004, 2005),.

2-й Всероссийской конференции с международным участием «Микроциркуляция в клинической практике» (Санкт-Петербург, 2006), на объединенном заседании сотрудников кафедр ГОУ ВПО Новосибирской государственной медицинской академии, и научных сотрудников лабораторий ГУ НИИ клинической и экспериментальной лимфологии СО РАМН (Новосибирск, 2006).

Публикации:

По теме диссертации опубликовано 12 печатных работ.

Структура и объем диссертации

:

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, главы с описнием материала и методов исследования, собственных результатов с их обсуждением, заключения, выводов, практических рекомендаций и списка литературы. Работа изложена на 194 страницах компьютерного текста, содержит 16 таблиц, иллюстрирована 62 рисунками.

Список литературы

включает 459 источников (111 русскоязычных и 348 иностранных авторов).

ВЫВОДЫ.

1. Через 1,5−2 месяца после родов отсутствуют достоверные изменения гемо-микроцикуляции и лимфотока в глубоких слоях эндометрия, миометрии и рубце миометрия у нерожавших крыс с рубцом на матке и рожавших крыс после лапаротомни и в условиях моделирования рубца миометрия, по сравнению с интактными животными, что связано с нормализацией гормонального фона и завершением послеродовой инволюции матки.

2. У крыс после родов с рубцом на матке в миометрии увеличивается относительное и абсолютное количество эритроцитов, по сравнению с интактными животными и нерожавшими крысами с рубцом на матке, что связано с геморрагиями и нарушениями сосудистой проницаемости.

3. В процессе беременности и естественной родовой деятельности происходит повреждение не самого рубца на матке, а его пограничной с миометрн-ем зоны, о чем свидетельствуют предшествующие кровоизлияния и явления лимфостаза, большее число лимфоцитов, нейтрофилов, моноцитов, макрофагов и эритроцитов на границе рубца и миометрия у животных после родов.

4. В подвздошных лимфатических узлах животных после родов увеличена объемная плотность соединительной ткани, расширены мякотпые тяжи и мозговые синусы, при этом уменьшена относ! ггельная площадь паракор-текса. Данные изменения обусловлены физиологическими изменениями иммунитета и лимфотока в результате беременности и родов. Морфологические изменения данных лимфоидных органов, специфичные для течения беременности и родов, у животных с рубцом на матке отсутствуют.

5. Во всех зонах подвздошных лимфатических узлов животных после родов увеличено количество макрофагов и нежизнеспособных клеток, что связано с травмой при лапаротомни во время моделирования рубца на матке. Вследствие антигенной стимуляции во время беременности, у рожавших крыс после родов во всех структурах подвздошных лимфатических узлов возрастает число плазматических клеток. В синусной системе подвздошных лимфатических узлов животных после родов с рубцом на матке увеличено количество эритроцитов, что обусловлено наличием и рассасыванием геморрагией, обнаруженных на границе рубца на матке с миометрием.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. При установлении показаний и противопоказаний к родам с рубцом на матке, при изучении состоятельности рубца, необходимо исследовать не только собственно рубец, но и пограничную с ним зону, то есть те участки, в которых возможны отрывы гладкомышечных клеток миометрия от гру-боволокнистой соединительной ткани рубца.

2. Однократная беременность и естественные роды с рубцом на матке допустимы при условии отсутствия симптомов несостоятельности рубца миометрия и окружающих тканей по результатам инструментальных методов обследования и клиническим данным.

3. Противопоказанием к повторному естественному родоразрешению при наличии рубца на матке могут быть полости с жидкостью и геморрагии в рубце на матке и пограничной с ним зоны, обнаруженные по данным УЗИ или других инструментальных исследований.

Показать весь текст

Список литературы

  1. М.Г. Гематологический атлас. М.: Медицина. 1985. 344 с.
  2. Г. Г. Морфометрия в патологии. М. Медицина, 1973. 248 с.
  3. Г. Г. Введение в количественную патологическую морфологию. М.: Медицина, 1980. 216 с.
  4. Г. Г., Яблучанскнй Н. И., Губенко В. Г. Системная стереометрия в изучении патологического процесса. М.: Медицина, 1981. 192 с.
  5. Г. Г., Невзоров В. П., Невзорова О. Ф. Системный стереометрический анализ ультраструктур клеток. Кишинев: Штиница, 1984. 168 с.
  6. Ю.И., Юрина H.A., Котовский Е. Ф. и др. Гистология. М.: Медицина, 2001.744 с.
  7. В.Н., Игнатков В. Я. Роль эстрогенчувствительных нейронов арку-атной области гипоталамуса в механизме освобождения лютеинизирующе-го гормона. // Пробл. Эндокринол. 1978. — Т. 24. — № 2. — С. 53−59.
  8. Т.В. Лимфатический регион матки крыс после введения химио-терапевтических средств с коррекцией экстрактом Pentaphylloides fruticosa: Дисс.. каид. мед. наук. Новосибирск, 2005. 201 с.
  9. М.А., Мареева Л. С., Мельников А. П. Применение эхографии в ведении родов у женщин с рубцом матки после кесарева сечения // Аку-шерст. и гинекол. 1991. — № 8. — С. 49−50.
  10. Ю.Борисов A.B. Структурные основы моторной функции лнмфангиона. // Проблемы функциональной лимфологии. Новосибирск, 1982. — С. 24−26.
  11. П.Борисов A.B. Структурные основы моторной функции лимфатического узла. // Функциональная морфология лимфатических узлов и других органов иммунной системы и их роль в иммунных процессах. М., 1983. — С. 21−22.
  12. A.B. Функциональная морфология лнмфангиона. // Лимфатический сосуд. Л., 1984. — С. 5−16.
  13. A.B. Архитектоника, гистотопография и взаимосвязь миоцитовлимфатического сосуда и узла. //Лимфатический узел. Л., 1987. — С. 4−14.
  14. A.B. Лимфангион: итоги и перспективы. // Лимфангион (анатомия, фшиология, патология). Л., 1990. — С. 5−17.
  15. A.B. Принципы конструкции лимфатического сосуда в свете теории лимфаигиона. // Структурно-функциональные аспекты лимфатической системы: Вып. 1. С-Пб., 1997. — С. 6−12.
  16. A.B. Теория конструкции лимфангиона. // Морфология. — 1997. -Т. 112.-№ 5.-С. 7−17.
  17. Ю.И., Склянова H.A., Склянов Ю. И., Донских Н. В. Пути оттока лимфы от матки и ее региональные лимфатические узлы у крысы на различных стадиях беременности. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1982. — Т. 83. -№ 8.-С. 49−53.
  18. Ю.И., Григорьев В. Н. Лимфатический узел при циркуляторных нарушениях. Новосибирск: Наука, 1986. 272 с.
  19. Ю.И., Склянов Ю. И., Склянова H.A. Внеорганное лимфатическое русло матки и внезародышевые органы при гипотегоивном синдроме беременных (экспериме1ггалыю-морфофункциональный аспект). // Акушер. и гинекол. 1987. -№ 2. — С. 70−72.
  20. Ю.И., Услогов Е. Д., Склянова H.A., Склянов Ю. И. Изменения микроциркуляторного русла матки и ее регионарных лимфатических узлов во время беременности. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1987. — Т. 93. — № 12.-С. 40−43.
  21. Ю.И., Склянова H.A., Иванов В. В., Склянов Ю. И., Семешок A.B. Влияние низкомолекулярных токсикантов на органы иммунитета матери и потомства. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1989. — Т. 96. — № 4. — С. 4145.
  22. Ю.И., Склянова H.A., Склянов Ю. И., Патрушева C.B. Морфо-функциональная характеристика лимфатических узлов у мышей разных линий при введении тшуномодуляторов. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. — 1990. Т. 99. — № 7. — С. 68−72.
  23. Ю.И., Ванда A.A., Успогов Е. Д., Склянова H.A., Пасман Н. М. Структурно-функциональные преобразования подвздошных лимфатических узлов при беременности, осложненной кровопотсрсй. // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1992. — Т. 114. — № 11. — С. 546−548.
  24. Ю.И., Широкова Н. В., Склянова H.A., Склянов Ю. И. Состояние лимфоидных органов материнского организма как отражение эффективности коррекции венозного застоя при беременности у крыс. // Морфол. -1992.-Т. 102.-№ 5.-С. 70−76.
  25. Ю.И., Курганов С. А., Дергачева Т. Н., Ефремов A.B., Старкова Е. В. Состояние лимфатической системы при воспалении внутренних половых органов. // Морфол. 1999. — Т. 115. — № 2. — С. 30−33.
  26. К.С., Басин Б. Л. Морфологические и гистохимические характеристики рубца стенки матки после корпорального кесарева сечения // Вопр. охран, материн, и детст. 1969. — Т. 14. — № 12. — С. 42−46.
  27. Э.Р. Морфометрия легких человека. М.: Медицина, 1970. 176 с.
  28. А.Л. Разрыв матки вдоль рубца после кесарева сечения // Вопр. охран, материн, и детст. 1967. — Т. 12. — № 1. — С. 64−65.
  29. С.С. Регионарные особенности конструкции соединительнотканного остова лимфатических узлов человека: Дисс. канд. мед. наук. М., 1971. 193 с.
  30. Воспаление. Ненаркотические анальгетики. Руководство для врачей. М.: Информационный Центр «Гера», 1997.
  31. Р., Ковачев К. Ултраструктурни промени на маточния епител и имунокомпетентннте клетки на дренираштнте матката лимфни вузли през бременноетта при свине. // Ветеринарно-медицински науки. 1986. — Т. 23. -№ 10.-С. 54−64.
  32. A.A. Геометрические методы количественного анализа агрегатов под микроскопом. Львов: Госгеолитиздат, 1941. 263 с.
  33. A.A. Геометрические методы количественного анализа агрегатов. М.: Гос, шд-во. геологич. лит., 1941.
  34. В.Н. Морфологические методы исследования сосудистого русла. Новосибирск: СО РАМН, 1997. 440 с.
  35. С.Н., Фрадков Г. Ф. Кинорентгснолошческое исследование функции матки и рубца после кесарева сечения // Вопр. охр. материн, и детст. 1975. — Т. 20. — № 2. — С. 67−72.
  36. И.М. Уретрально-вагинальная фистула и рубцовый стеноз мочеточников после акушерских и гинекологических операций // Акушерст. и гииекол. 1974. — № 8. — С. 59−60.
  37. М.А., Кульбах О. С., Подосинников И. С. Строение вилочковой железы, подвздошных и брыжеечных лимфатических узлов у крыс в разные периоды беременности. //Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1985. — Т. 89. -№ 10.-С. 71−76.
  38. A.B. Микролимфогемоциркуляция васкуляризированных комплексов тканей в разные сроки после их трасплантации: Дисс.. канд. мед. наук. Новосибирск, 2000. 192 с.
  39. В.Г., Субботин М. Я., Афанасьев Ю. И., Котовский Е. Ф. Основы гистологии и гистологической техники. М.: Медицина, 1967. 268 с.
  40. И.П., Западшок В. И., Захария Е. А., Западшок Б. В. Лабораторные животные. Киев: Biina школа, 1983. 383 с.
  41. И.Ф., Ковальский П. А. Цитология, гистология и эмбриология. М.: Колос, 1976. 448 с.
  42. Г. С., Полонский Ю. З. К методике анализа количественных показателей в цитологии. //Цитология. 1970. — Т. 12. — № 3. — С. 399−403.
  43. З.С., Гитман Г. И. Гистологическая структура рубца матки после кесарева сечения // Педиатр., акушерст. и гинекол. 1969. — Т. 31. — № 6. — С. 45−47.
  44. К.П. Реваскуляризация трансплантированных сложных комплексов тканей: Дисс.. канд. мед. наук. Новосибирск, 2001. 180 с.
  45. В.И., Мельман Е. П., Нейко Е. М., Шутка Б. В. Гистофизиология капилляров. СПб.: Наука, 1994.
  46. Л.Г. Зависимость диапедеза эозииофильных лейкоцитов в тканях матки и влагалища белых крыс от половых гормонов. Автореф. дисс.. канд. биол. наук. Тбилиси, 1991. 18 с.
  47. И.А. Морфология рубца миометрия после операции кесарева сечения и ушивания матки различными шовными материалами: Дисс.. канд. мед. наук. Новосибирск, 2002. 191 с.
  48. В.И., Мареева Л. С., Шалаев О. Н., Левашова И. И., Коваленко Т. М., Пурикова Т. С., Буреева В. Л., Бударецкая З. С. Роды у беременных женщин с предыдущими операциями на матке // Акушерст, и гинекол. 1994.-№ 6.-С. 41−45.
  49. М.И., Костюченок Б. М. Раны и раневая инфекция: Руководство для врачей: 2-е шд., перераб. и доп. М.: Медицина., 1990. 592 с.
  50. В.А., Афанасьев A.A. Ведение беременности и родов у женщин с рубцом матки // Акушерст. и гинекол. 1986. — № 1. — С. 74−77.
  51. О.С. Клеточный состав различных структурных зон подздошных и брыжеечных лимфатических узлов у крыс при беременности. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1984. — Т. 86. — № 4. — С. 39−45.
  52. Л., Стратиев С. Морфологична характеристика на цикатрикса при повторно цезарево сечение. //Акушерство и гинекология (София). -1993.-Т. 32.-№ 2.-С. 12−14.
  53. В.А., Стрижаков А. Н., Железнов Б. И. Эхографические и морфологические параллели в оценке состояния шва матки // Акушерст. и гинекол. 1991. -№ 8. — С. 44−49.
  54. Лейн-Петтер У. Обеспечение научных исследований лабораторными животными. М: Медицина, 1964. 194 с.
  55. Р. Патогистологическая техника и практическая гистохимия. М.: Мир, 1969. 648 с.
  56. И.В., Шевела А. И., Титова Л. В. Варианты и стадии склероза регионарных лимфатических узлов при лимфедеме. // Арх. патол. 1998. -Т. 60. -№ 2.-С. 47−51.
  57. И.В., Кохан И. А., Пекарев О. Г. Варианты структурной организации рубца на матке после абдоминального родоразрешения. // Инновации в охране здоровья людей: Мат. науч.-практ. конф. Новосибирск, 2001.-С. 119.
  58. И.В., Шевела А. И., Егоров В. А., Павлюк Е.Г., Майбородина
  59. B.И. Структурная органшация паховых лимфатических узлов человека при первичной лимфедеме нижних конечностей. // Патология кровообращения и кардиохирургия. 2001. — № 4. — С. 48−54.
  60. И.В., Домников A.B., Ковалевский К. П. Количество тучных клеток как индикатор ангиогенеза в аутотрансплантированных тканях. // Морфология. 2003. — Т. 124. — № 6. — С. 66−70.
  61. И.В., Нимаев В. В., Шевела А. И., Домников A.B., Павлюк Е. Г., Егоров В. А. Морфология кожи при лимфостазе и лимфоррее. // Бюлл. Сиб. отд-ния РАМН. 2005. — № 1. — С. 132−137.
  62. И.В., Нимаев В. В., Шевела А. И., Домников A.B., Павлюк Е. Г., Красилышков С. Э., Тархов A.B., Герасимов A.B., Егоров В. А. Состояние кожи при лимфостазе после онкологических операций. // Проблемы клинической медицины. — 2005. № 3. — С. 28−32.
  63. И.О., Сидорова И. С., Леонтьева Г. В., Поляков В. Н., Фирсова Е. В. Экспериментальная оценка возможности фиксации швов матки после кесарева сечения полимерными материалами // Акушерст. и гинекол. -1989.-№ 3.-С. 33−36.
  64. Л.С., Левашова И. И., Мильман Д. В. Оценка качества рубца матки после кесарева сечения // Акушерст. и гинекол. 1989. — № 3. — С. 37−38.
  65. Л.С., Левашова И. И., Мельников А. П., Зайцева З. С., Белоусов М. А., Оберг O.K. Проблемы и перспективы родов у беременных женщин с рубцом матки после кесарева сечения // Акушерст. и гинекол. 1993. — № 1. — С. 22−27.
  66. Ю.С. Паховые лимфатические узлы человека при хронической венозной недостаточности нижних конечностей: Дисс.. канд. мед. наук. Новосибирск, 2003. 308 с.
  67. Т.В. Структурная организация паховых лимфатических узлов человека при сочетаппом поражении венозного и лимфатического русла нижней конечности: Дисс.. кшщ. мед. наук. Новосибирск, 2002. 183 с.
  68. И.В. Самопроговольный разрыв шейки матки на 23−24 неделе беременности // Педиатр., акушерст. и гинекол. 1967. — Т. 4. — С. 61.
  69. Е.Г. Морфологические и клинические аспекты изменений структурной организации паховых лимфатических узлов при циркуляторных нарушениях нижних конечностей: Дисс.. докт. мед. наук. Новосибирск, 2005. 546 с.
  70. Г. А., Верховский А. Л., Иванцов Б. Ф. Применение тазовой флебографии матки для определения состоятельности рубца матки после классического кесарева сечения // Акушерст. и гинекол. 1972. — Т. 48. — № 6. -С. 56−59.
  71. Г. А., Штемберг М. И. Современные показания для абдоминального кесарева сечения // Акушерст. и гинекол. 1980. — № 11. — С. 21−24.
  72. Э. Гистохимия теоретическая и прикладная. М.: Изд-во иностр. лит., 1964. 964 с.
  73. Н. А. Биометрия. М.: Изд-во Московского ун-та, 1970. 368 с.
  74. В.В., Котава Л. Г., Мхитаров В. А. Особенности диапедеза эози-нофнльных лейкоцитов в матке белых крыс. // Пробл. Эндокринол. 1984. -Т. 30. — № 3. — С. 76−79.
  75. Л.В., Бубнова H.A., Борисов A.B. и др. Современные представления о патогенезе лимфедемы нижних конечностей. // Структурно-функциональные основы лимфатической системы. СПб., 1997. — С.64−66.
  76. М.Р., Юрина H.A., Этинген Л. Е. Лимфатический узел. М.: Меди-щша, 1978. 272 с.
  77. Д.С., Перов Ю. Л. Микроскопическая техника: Руководство для врачей и лаборантов. М.: Медицина, 1996. 544 с.
  78. П.П., Метелкин А. И., Гудкова Е. И. Лабораторные животные. М: Медгиз., 1952.316 с.
  79. H.A., Шкурупий В. А., Григорьев В. Н. Морфометрическое исследование ультраструктурной оргашоации эндотелиоцнтов кровеносных1.капилляров подвздошных лимфатических узлов крыс при беременности. //
  80. Бюлл. эксп. биол. и мед. 1987. — Т. 104. — № 11. — С. 630−633.
  81. Н.Д. Механшмы возрастных различий в условиях феномена постоянного эструса у крыс. Автореф. дисс.. кшщ. биол. наук. М., 1989. 18 с.
  82. Н.В. Критерии состоятельности рубце на матке у пациенток при беременности после операции кесарева сечения: Дисс.. канд. мед. наук. Новосибирск, 2005. 176 с.
  83. А.Н., Лебедев В. А. Клиническое значение факторов, влияющих на течение беременности и статус новорожденных детей, родившихся от женщин с рубцом на матке // Акушерст. и гинекол. 1991. — № 4. — С. 1318.
  84. А.Н., Лебедев В. А. Современные методы выбора рациональной процедуры ведения беременности и родов у женщин с рубцом на матке // Акушерст. и гинекол. 1991. — № 2. — С. 8−13.
  85. А.И., Пауков B.C., Кауфман О. Я. Воспаление. // Общая патология человека. М.: Медицина, 1990. — Т. 2. — С. 3−74.
  86. О.И., Прянишников В. А., Жемкова З. П. Биопсии эндометрия. М.: Медицина, 1978. 232 с.
  87. Н.Б., Шилов А. Г. Возможности применения стереологи-ческого анализа в изучении структурной организации клеток и тканей // Применение стереологическнх методов в цитологии. Новосибирск, 1974. — С. 54−62.
  88. Хэм А., Кормак Д. Гистология в 5-ти томах: Пер. с англ. М.: Мир, 1983.
  89. В.А. Ультраструктура артериального и венозного отделов капилляров. // Арх. анатом., гистол. и эмбриол. 1967. — Т. 52. — № 1. — С. 2431.
  90. А.Б., Милованова З. П. Фибробласт-фибробласт: Ультраструктурные механизмы резорбции коллагеновых волокон при инволюции соединительной ткани // Арх. патол. 1975. — Т. 37. — № 3. — С. 13−19.
  91. М.Ф. Сосуды и нервы шва матки после кесарева сечения (кли-нико-экспериментальное исследование // Вопр. охран, материн, и детст. -1968.-Т. 13.-№ 6.-С. 50−57.
  92. М. Раждане след прекарано цезарово сечение. //Акушерство и гинекология (София). 2000. — Т. 39. — № 3. — С. 6−9.
  93. Ш. Ярцева Л. Д., Абрамченко В. В. Процедурные проблемы ведения беременности и родов у женщин, имевших в прошлом операции на матке // Акушерст. и гинекол. 1980. -№ 11. — С. 41−43.
  94. Abbassi Н., Aboulfalah A., el Karroumi М., Bouhya S., Bekkay M. Vaginal birth after cesarean delivery: can the trial of labor be extended. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1998. — Vol. 27. — № 4. — P. 425−429.
  95. Abell D.A., Evan P.P. Rupture of a caesarean section scar in the second trimester of pregnancy. // S. Afr. Med. J. 1973. — Vol. 47. — № 41. — P. 1962−1964.
  96. Aboyeji A.P., Ijaiya M.D., Yahaya U.R. Ruptured uterus: a study of 100 consecutive cases in Ilorin, Nigeria. // J. Obstet. Gynaecol. Res. 2001. — Vol. 27. -№ 6.-P. 341−348.
  97. Ahmed S.M., Daffalla S.E. Incidence of uterine rupture in a Teaching Hospital, Sudan. // Saudi Med. J. 2001. — Vol. 22. — № 9. — P. 757−761.
  98. Aispuro Z.M.A. Radiologic control of post-cesarean cicatrization. Preliminary report. // Ginecol. Obstet. Mex. 1970. — Vol. 27. — № 161. — P. 359−366.
  99. Akar M.E., Yilmaz Z., Gokmen O. Zekai Fetal survival despite unrecognized uterine rupture resulting from previous unknown corporeal scar. // Arch. Gynecol. Obstet. 2001. — Vol. 265. — № 2. — P. 89−90.
  100. Alves M.F., Cordeiro A., Cardoso M.d., Graca L.M. Trial of labor after cesarean section. Two years' experience. // Acta Med. Port. 1993. — Vol. 6. — № 12. -P. 573−576.
  101. Anderson W.A., Gabriel B.W., Nerurkar S.G., Wyche J. IL, Yates P.E., Hanker J.S. Peroxidases induced in rat uterus by estrogen administration. II. Cyto-chemical and biochemical heterogeneity. // J. Submicrosc. Cytol. 1986. — Vol. 18.-№ 4.-P. 683−690.
  102. Ansell J.D., McDougall C.M., Speedy G,. Inchley C.J. Changes in lymphocyte accumulation and proliferation in the lymph nodes draining the pregnant uterus. // Clin. Exp. Immunol. 1978. — Vol. 31. — № 3. — P. 397−407.
  103. Appleton B., Targett C., Rasmussen M., Readman E., Sale F., Permezel M. Vaginal birth after Caesarean section: an Australian multicentre study. VBAC
  104. Armstrong V., Hansen W.F., Van Voorhis B.J., Syrop C.H. Detection of cesarean scars by transvaginal ultrasound. // Obstet. Gynecol. 2003. — Vol. 101. -№ 1,-P. 61−65.
  105. Arriaza C.A., Mena M.A., Tchernitchin A.N. Prenatal androgenization selectively modifies some responses to oestrogen in the prepubertal rat uterus. // J. Endocrinol. 1989. — Vol. 120. — № 3. — P. 379−384.
  106. Athanassakis I., Chaouat G., Wegmann T.G. The effects of anti-CD4 and anti-CD8 antibody treatment on placental growth and function in allogeneic and syngeneic murine pregnancy. // Cell. Immunol. 1990. — Vol. 129. — № 1. — P. 13−21.
  107. Baines M.G., Pross H.F., Millar K.G. Effects of pregnancy on the maternal lymphoid system in mice. // Obstet. Gynecol. 1977. — Vol. 50. — № 4. — P. 457 461.
  108. Baker A.P., Bergman F., Paul K.G. Studies of eosinophil granulocytes. 3. Steroid hormones and number of eosinophils in the uterus of the mouse and rat. // Acta Endocrinol. (Copenh). 1967. — Vol. 54. — № 4. — P. 696−706.
  109. Bakke O., Ronning O.W. The role of protein metabolism in glucocorticoid-induced prolongation of G1 phase in human NHIK 3025 cells. //J. Cell Physiol. 1982. — Vol. 113. — № 3. — P. 459−464.
  110. Bamberger A.M., Milde-Langosch K., Loning T., Bamberger C.M. The glucocorticoid receptor is specifically expressed in the stromal compartment of the human endometrium. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2001. — Vol. 86. — № 10. -P. 5071−5074.
  111. Barbot J. Ilysteroscopy and hysterography. // Obstet. Gynecol. Clin. North.
  112. Am. 1995. — Vol. 22. — № 3. — P. 591−603.
  113. Baumann P., Tchernitchin A.N., Grunert G., Ball P. Effect of various doses of catecholestrogens on uterine eosinophilia in the immature rat. // Experientia. -1986. Vol. 42. — № 2. — P. 165−167.
  114. Bauminger S., Peleg S. Changes in immunological activity of rat lymphoid organs during pregnancy. // Clin. Exp. Immunol. 1978. — Vol. 32. — № 1. — P. 179−185.
  115. Bautrant E., Boubli L., Nadal F., Khouzami A., d’Ercole C., Azoulay P., Lavergne N., Blanc B. Delivery after 2 previous cesarean sections. A series of 41 uterine trials. //J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1993. — Vol. 22. -№ 5.-P. 543−547.
  116. Beard R.J., Johnson D.A. Fetal distress due to cord prolapse through a fenestration in a lower segment uterine scar. // J. Obstet. Gynaecol. Br. Commonw. 1972. — Vol. 79. — № 8. — P. 763.
  117. Bedoya C., Bartlia J.L., Rodriguez I., Fontan I., Bedoya J.M., Sanchez-Ramos J. A trial of labor after cesarean section in patients with or without a prior vaginal delivery. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1992. — Vol. 39. — № 4. — P. 285−289.
  118. Ben A.N., Sadfi A., Gara F. Advantages and risk of a trial of vaginal delivery in the scarred uterus. // Tunis Med. 2003. — Vol. 81. — № 8. — P. 563−566.
  119. Benitez-Bribiesca L., Villanueva C., Amezcua J.L., Guevara R., Freyre R. Experimental uterine eosinophilia in the rat. The role of some inhibitors of ara-chidonic acid metabolism. //Arch. Invest. Med. (Mex). 1989. — Vol. 20. — № 3. — P. 273−278.
  120. Berghahn L., Christensen D., Droste S. Uterine rupture during second-trimester abortion associated with misoprostol. // Obstct. Gynecol. 2001. — Vol. 98.-№ 5.-PL 2.-P. 976−977.
  121. Bergman F., Damber M.G., Linden U., Paul K.G. Mast cells and eosinophil granulocytes in the oestrogen-stimulated mouse uterus. // Acta Endocrinol. (Co-penh). 1972. — Vol. 69. — № 1. — P. 77−86.
  122. Bernadotte F., Mattsson R. A fraction of murine placental extract enhances IgA production in cultured splenocytes. //J. Reprod. Immunol. 1992. — Vol. 21. -№ 2.-P. 189−202.
  123. Bischof R.J., Lee R., Lee C.S., Meeusen E. Dynamic changes in the lymphocyte subpopulations of pig uterine lymph nodes. // Vet. Immunol. Immunopa-thol, 1996. — Vol. 51. — № 3−4. — P. 315−324.
  124. Blanco J.D., Collins M., Willis D., Prien S. Prostaglandin E2 gel induction of patients with a prior low transverse cesarean section. // Am. J. Perinatol. 1992. -Vol. 9.-№ 2.-P. 80−83.
  125. Boisselier P., Maghioracos P., Marpeau L., Hajali B., Barrat J. Changes in indications for cesarean section from 1977 to 1983. Apropos of 18,605 deliveries. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1987. — Vol. 16. — № 2. — P. 251 260.
  126. Bou Saba C., Nabhane G., Abboud J. Vaginal delivery with scarred uterus at the Hotel-Dieu of France, Beirut. // J. Med. Liban. 1992. — Vol. 40. — № 2. — P. 68−72.
  127. Bowers D., McKenzie D., Dutta D., Wheeless C.R., Cohen W.R. Growth hormone treatment after cesarean delivery in rats increases the strength of the uterine scar. // Am. J. Obstet. Gynecol. 2001. — Vol. 185. — № 3. — P. 614−617.
  128. Bretelle F., Cravello L., Shojai R., Roger V., D’ercole C., Blanc B. Vaginal birth following two previous cesarean sections. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2001. — Vol. 94. — № 1. — P. 23−26.
  129. Bretelle F., Cravello L., Shojai R., Roger V., D’ercole C., Blanc B. Vaginalbirth following two previous cesarean sections. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Re-prod. Biol. 2001. — Vol. 94. -№ 1. — P. 23−26.
  130. Brown J.E., Nellor J.E. A relationship between ovarian and genital tract eosinophilic granulated cells.// Anat. Rec. 1968. — Vol. 621. — № 1. — P. 15−24.
  131. Buchheit H., Loskant G. Rupture of uterine scar in early pregnancy with continued pregnancy and surgical delivery of a mature infant. // Geburtshilfe Frauenheilkd. -1967. Vol. 27. — № 11. — P. 1081−1086.
  132. Buhimschi C.S., Buhimschi I.A., Patel S., Malinow A.M., Weiner C.P. Rupture of the uterine scar during term labour: contractility or biochemistry? // BJOG. 2005. — Vol. 112. — № 1. — P. 38−42.
  133. Burmucic R., Hofmann P. Is palpation of the healed section scar after previous Cesarean section with subsequent vaginal delivery necessary? // Gynakol. Geburtshilfliche Rundsch. 1992. — Vol. 32. — Suppl 1. — P. 76−77.
  134. Canis M., Schoeffler P., Monteillard C., Mage G., Bruhat M.A. Vaginal delivery after cesarean section: use of peridural analgesia and oxytocics. Apropos of 87 cases with cicatriceal proof. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. 1985. — Vol. 80. -№ 1.-P. 49−53.
  135. Carter J., Dresser D.W. Pregnancy induces an increase in the number of im-munoglobulin-secreting cells. // Immunology. 1983. — Vol. 49. — № 3. — P. 481 490.
  136. Carter J., Newport A., Keeler K.D., Dresser D.W. FACS analysis of changes in T and B lymphocyte populations in the blood, spleen and lymph nodes of pregnant mice. // Immunology. 1983. — Vol. 48. — № 4. — P. 791−797.
  137. Carter J. The maternal immunological response during pregnancy. // Oxf. Rev. Reprod. Biol. 1984. — Vol. 6. — P. 47−128.
  138. Castaneda S., Karrison T., Cibils L.A. Peripartum hysterectomy. // J. Perinat. Med. 2000. — Vol. 28. — № 6. — P. 472−481.
  139. Caterini H.R., Rubinos M., Kaminetzky H.A. Amniography during subsequent pregnancy for evaluating the post-cesarean section uterine scar. // Obstet. Gynecol. 1972. — Vol. 39. — № 5. — P. 717−720.
  140. Chambers S.P., Clarke A.G. Measurement of thymus weight, lumbar node weight and progesterone levels in syngeneically pregnant, allogeneically pregnant, and pseudopregnant mice. // J. Reprod. Fertil. 1979. — Vol. 55. — № 2. — P. 309−315.
  141. Chantakru S., Miller C., Roach L.E., Kuziel W.A., Maeda N., Wang W.C., Evans S.S., Croy B.A. Contributions from self-renewal and trafficking to the uterine NK cell population of early pregnancy. // J. Immunol. 2002. — Vol. 168. -№ l.-P. 22−28.
  142. Chantakru S., Wang W.C., van den Heuvel M., Bashar S., Simpson A., Chen Q., Croy B.A., Evans S.S. Coordinate regulation of lymphocyte-endothelial interactions by pregnancy-associated hormones. // J. Immunol. 2003. — Vol. 171. — № 8. — P. 4011−4019.
  143. Chattopadhyay S.K., Sherbeeni M.M., Anokutc C.C. Planned vaginal delivery after two previous caesarean sections. // Br. J. Obstet. Gynaecol. 1994. — Vol. 101.-№ 6.-P. 498−500.
  144. Chen K.C., Hsieh T.T. Rupture of gravid uterus: a eight-year clinical analysis and review of the literature. // Changgeng Yi Xue Za Zhi. 1992. — Vol. 15. — № l.-P. 15−22.
  145. Chmelik V., Suk K. Spiral cesarean section hysterography. // Zentralbl. Gynakol. — 1982. — Vol. 104. — № 23. — P. 1537−1540.
  146. Clark D.A., McDermott M.R. Impairment of host vs graft reaction in pregnant mice. I. Suppression of cytotoxic T cell generation in lymph nodes draining the uterus. //J. Immunol. 1978. — Vol. 121. — № 4. — P. 1389−1393.
  147. Clarke A.G. Pregnancy-induced involution of the thymus can be prevented by immunizing with paternal skin grails: a strain-dependent effect. // Clin. Exp. Immunol. 1979. — Vol. 35. — № 3. — P. 421−424.
  148. Cohain J.S. The many ways to sew up a uterus. «Single-layer» vs. «double-layer» cesarean repair: what’s best? // Midwifery Today Int. Midwife. 2004. -№ 70. — P. 32−34.
  149. Colombo L.L., Lopez M.C., Ilerkovits J., Roux M.E. T and B lymphocytepopulations in uterus draining lymph nodes at estrus and diestrus in Wistar rats. // Am. J. Reprod. Immunol. Microbiol. 1988. — Vol. 16. — № 4. — P. 143−145.
  150. Cosson M., Dufour P., Nayama M., Vinatier D., Monnier J.C. Obstetrical prognosis of the post-cesarean uterus. 641 cases. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Re-prod. (Paris). 1995. — Vol. 24. — № 4. — P. 434−439.
  151. Daus K.M. Spontaneous rupture of low transverse cesarean scar. // South. Med. J. 1995. — Vol. 88. — № 5. — P. 600.
  152. Davydov S.N., Fradkov G.F. X-ray cinematography of uterine function after cesarean section. // Radiol. Diagn. (Berl). 1974. — Vol. 15. — № 1. — P. 27−38.
  153. Delarue T., Pele P. Prevention of rupture of the uterus before or during birth in women with previous caesarian sections: report on 14 cases. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1981. — Vol. 10. — № 3. — P. 259−267.
  154. Dellenbach P., Gillet J.Y., Philippe E., Koritke J.G., Muller P. Experimental study on the female rabbit of various technics for repair of cesarean hysterotomy. // Gynecol. Obstet. (Paris). 1968. — Vol. 67. — № 4. — P. 469−478.
  155. Dellenbach P., Szwarcberg R., Walter J.P., Alaoui T., Muller P. Main causes of repetitive abortion revealed by hysterography. // J. Radiol. Electrol. Med. Nucl. -1971. Vol. 52. — № 8. — P. 522−523.
  156. Demianczuk N.N., Hunter D.J., Taylor D.W. Trial of labor after previous cesarean section: prognostic indicators of outcome. //Am. J. Obstet. Gynecol. -1982. Vol. 142. — № 6. — Pt. 1. — P. 640−642.
  157. D’ercole C., Bretelle F., Picchon L., Shojai R., Boubli L. Is cesarean section indicated for the cicatricial uterus? // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). -2000. Vol. 29. — Suppl. 2. — P. 51−67.
  158. Dhaifalah I. Spontaneous rupture of a previously scared uterus. A case report and an overview of risk factors in Yemen Republic. // Biomed. Pap. Med. Fac. Univ. Palacky Olomouc Czech Repub. 2001. — Vol. 145. — № 2. — P. 79−80.
  159. Diab A.E. Uterine ruptures in Yemen. // Saudi Med. J. 2005. — Vol. 26. — № 2. — P. 264−269.
  160. Dicle O., Kucukler C., Pirnar T., Erata Y., Posaci C. Magnetic resonance imaging evaluation of incision healing after cesarean sections. // Eur. Radiol. -1997.-Vol. 7. -№ 1. -P. 31−34.
  161. Dresser D.W. The potentiating effect of pregnancy on humoral immune responses of mice. //J. Reprod. Immunol. 1991. — Vol. 20. — № 3. — P. 253−266.
  162. Dubuisson J.B., Chapron C., Chavet X., Gregorakis S.S. Fertility after laparoscopic myomectomy of large intramural myomas: preliminary results. // Hum. Reprod. 1996. — Vol. 11. — № 3. — P. 518−522.
  163. Dunnihoo D.R., Otterson W.N., Mailhes J.B., Lewis D.F. Jr, Grafton W.D., Brown C.C. An evaluation of uterine scar integrity after cesarean section in rabbits. // Obstet. Gynecol. 1989. — Vol. 73. — № 3. — Pt. 1. — P. 390−394.
  164. Dyack C., Hughes P.F., Simbakalia J.B. Vaginal delivery in the grand multipara following previous lower segment cesarian section. // J. Obstet. Gynaecol. Res. 1997. — Vol. 23. — № 2. — P. 219−222.
  165. Egwuatu V.E., Ezeh I.O. Vaginal delivery in Nigerian women after a previous cesarean section. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1990. — Vol. 32. — № 1. — P. 1−6.
  166. Ekele B.A., Audu L.R., Muyibi S. Uterine rupture in Sokoto, Northern Nigeria are we winning? // Afr. J. Med. Med. Sci. — 2000. — Vol. 29. — № 3−4. — P. 191−193.
  167. El Mansouri A. Delivery in the presence of cicatricial uterus. Apropos of 150 cases. //Rev. Fr. Gynecol. Obstet. 1994. — Vol. 89. — № 12. — P. 606−612.
  168. Esposito M.A., Menihan C.A., Malee M.P. Association of interpregnancy interval with uterine scar failure in labor: a case-control study. // Am. J. Obstet. Gynecol. 2000. — Vol. 183.-№ 5.-P. 1180−1183.
  169. Ezechi O.C., Mabayoje P., Obiesie L.O. Ruptured uterus in South Western Nigeria: a reappraisal. // Singapore Med. J. 2004. — Vol. 45. — № 3. — P. 113 116.
  170. Fabian G. Cyclic changes in lymph vessels in the pig uterus. Studies of the endometrium. //Z. Lymphol. 1988. — Vol. 12. -№ 1. — P. 36−39.
  171. Faguer C. Uterine rupture due to placenta accreta at 22 weeks' pregnancy. Apropos of a case. //J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1998. — Vol. 17.5. P. 646−649.
  172. Fanner R.M., Kirsehbaum T., Potter D., Strong T.H., Medearis A.L. Uterine rupture during trial of labor after previous cesarean section. // Am. J. Obstct. Gynecol. -1991. Vol. 165. — № 4. — Pt. 1. — P. 996−1001.
  173. Fasubaa O.B., Adetiloye V.A., Baraletci A.C., Owolabi A. T, Dare F. Rupture of uterine scar with extrusion of twin fetuses into the urinary bladder a case report. // West. Afr. J. Med. — 2001. — Vol. 20. — № 2. — P. 158−160.
  174. Feeney JG. Perforation of the uterus causing rupture in subsequent pregnancy. Hli. J. Med. Sci. 1977. — Vol. 146. -№ 6. — P. 175−178.
  175. Fischer R., Schaefer H.E. Enzymological and histochemical investigations on the problem of the origin of tissue leukocytes. // Verh. Dtsch. Ges. Pathol. -1965.-Vol. 49.-P. 271−273.
  176. Fischer R., Schaefer H.E. On the problem of the origin of tissue eosinophils in the rat and mouse uterus. // Naturwissenschaften. 1965. — Vol. 52. — № 16. — P. 479−480.
  177. Fischer R., Schaefer H.E. Comparative cnzyme-histochemical studies on tissue eosinophils in the rat and mouse uterus. // Virchows Arch. Pathol. Anat. Physiol. Klin. Med. 1966. — Vol. 340. — № 3. — P. 231−242.
  178. Flamm B.L. Vaginal birth after cacsarean (VBAC). // Baillieres Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2001. — Vol. 15. — № 1. — P. 81−92.
  179. Fochem K. The pathological Findings of the hysterosalpingography. // Radiologe. 1975. — Vol. 15. — № 1. — P. 11−18.
  180. Foley J.J., Kettle M.J. Rupture of lower uterine segment scar during abortion at twenty-two weeks. //J. Obstet. Gynaecol. Br. Commonw. 1967. — Vol. 74. -№ 4.-P. 607.
  181. Forster B.B., Siu C.M., Murray J.B., Chung M.H. Transabdominal and transvaginal ultrasonography of uterine perforation following suction curettage. // Can. Assoc. Radiol. J. 1989. — Vol. 40. -№ 6. — P. 318−319.
  182. Forster P.M., McLean J.M., Gibbs A.C. Lymphoid response to pregnancy and pseudopregnancy in the rat. // J. Anat. 1979. — Vol. 128. — Pt 4. — P. 837−845.
  183. Fukuda M., Fukuda K., Shimizu T., Natsuyama E., Mochizuki M. Two types of translucent membrane of caesarean section scar tissue. // Lancet. 1992. -Vol. 339. — № 8787. — P. 254−255.
  184. Galand P., Tchernitchin N., Tchernitchin A.N. Dissociation of uterine eosino-philia and water imbibition from other estrogen-induced responses by nafoxi-dine pretreatment. // Mol. Cell Endocrinol. 1985. — Vol. 42. — № 3. — P. 227 233.
  185. Gardeil F., Daly S., Turner M.J. Uterine rupture in pregnancy reviewed. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 1994. — Vol. 56. — № 2. — P. 107−110.
  186. Gaucherand P. Frequency and indications of cesarean section. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. 1990. — Vol. 85. — № 2. — P. 109−111.
  187. Gelpke W. Value of hysterography after cesarean section for the assessment of uterine scar. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 1969. — Vol. 29. — № 1. — P. 26−32.
  188. Georgieva R. Dynamics of T-suppressor and T-helper lymphocytes and hacmolytic plaque-forming cells during normal pregnancy in the sow. // J. Re-prod. Immunol. 1984. — Vol. 6. -№ 3. — P. 151−156.
  189. Giannopoulos G., Jackson K., Tulchinsky D. Specific glucocorticoid binding in human uterine tissues, placenta and fetal membranes. // J. Steroid Biochem. -1983.-Vol. 19. -№ 3. P. 1375−1378.
  190. Gjoderum O., Rasmussen O.B., Grabe N. Total uterine rupture of a cesarean section scar during attempted vaginal delivery under epidural analgesia. // Ugeskr. Laeger. 1992. — Vol. 154. — № 36. — P. 2436−2437.
  191. Golan D., Aharoni A., Gonen R., Boss Y., Sharf M. Early spontaneous rupture of the post myomectomy gravid uterus. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1990. -Vol. 31.-№ 2.-P. 167−170.
  192. GoranovM., Popovich D. Anatomical and clinical correlations in uterine cicatrix after cesarean section (II). //Akush. Ginekol. (Sofiia). 1978. — Vol. 17. — № 2.-P. 119−125.
  193. Goranov M., Popovich D. Histological study of the uterine cicatrix after cesarean section (I). // Akush. Ginekol. (Sofiia). 1978. — Vol. 17. — № 1. — P. 14
  194. Gottesman S.R., Stutman O. Cellular immunity during pregnancy. I. Proliferative and cytotoxic reactivity of paraaortic lymph nodes. // Am. J. Reprod. Immunol. 1980. — Vol. 1. -№ 1. -P. 10−17.
  195. Gottesman S.R., Stutman O. Cellular immunity during pregnancy. II. Response to T and B cell mitogens. // Am. J. Reprod. Immunol. 1981. — Vol. 1. -№ 2.-P. 78−82.
  196. Gouon-Evans V., Pollard J.W. Eotaxin is required for eosinophil homing into the stroma of the pubertal and cycling uterus. // Endocrinology. 2001. — Vol. 142.-№ 10.-P. 4515−4521.
  197. Grunert G, Porcia M, Neumann G, Sepulveda S, Tchernitchin AN. Progesterone interaction with eosinophils and with responses already induced by oestrogen in the uterus. //J. Endocrinol. 1984. — Vol. 102. — № 3. — P. 295−303.
  198. Grunert G., Porcia M., Tchernitchin A.N. Differential potency of oestradiol-17 beta and diethylstilboestrol on separate groups of responses in the rat uterus. //J. Endocrinol. 1986. — Vol. 110. -№ 1. — P. 103−114.
  199. Gunin A.G. Effect of long-term glucocorticoid treatment on oestradiol-induced proliferation in the uterus of ovariectomized rats. // J. Endocrinol. -1998. Vol. 157. — № 3. — P. 481−488.
  200. Gunin A.G., Mashin I.N., Zakharov D.A. Proliferation, mitosis orientation and morphogenetic changes in the uterus of mice following chronic treatment with both estrogen and glucocorticoid hormones. // J. Endocrinol. 2001. — Vol.169. № 1. — P. 23−31.
  201. Haddad S., Maria B. Delivery of women with cicatricial uterus. // Presse Med. 1996. — Vol. 25. -№ 17. — P. 813−817.
  202. Halperin M.E., Moore D.C., Hannah W.J. Classical versus low-segment transverse incision for preterm caesarean section: maternal complications and outcome of subsequent pregnancies. // Br. J. Obstet. Gynaecol. 1988. — Vol. 95. -№ 10.-P. 990−996.
  203. Harris W.J. Uterine dehiscence following laparoscopic myomectomy. // Obstet. Gynecol. -1992. Vol. 80. — № 3. — Pt. 2. — P. 545−546.
  204. Haslam S.Z., McBlain W.A., Shyamala G. An empirical basis for the competition by dexamethasone to progesterone receptors as estimated with the synthetic progestin R5020. //J. Recept. Res. 1981. — Vol. 2. — № 5−6. — P. 435−451.
  205. Hassan A. Trial of scar and vaginal birth after caesarean section. // J. Ayub. Med. Coll. Abbottabad. 2005. — Vol. 17. — № 1. — P. 57−61.
  206. Head J.R., Seeling L.L. Jr. Lymphatic vessels in the uterine endometrium of virgin rats. // J. Reprod. Immunol. 1984. — Vol. 6. — № 3. — P. 157−166.
  207. Hebisch G., Kirkinen P., Haldemann R., Paakkoo E., Huch A., Huch R. Comparative study of the lower uterine segment after Cesarean section using ultrasound and magnetic resonance tomography. // Ultraschall. Med. 1994. — Vol. 15.-№ 3.-P. 112−116.
  208. Hegde U.C., Nainan R. T helper-2 type of interleukins with de novo germinal center formation in the spleen during murine pregnancy. // Am. J. Reprod. Immunol. 1998. — Vol. 40. — № 6. — P. 424−430.
  209. Helkjaer P.E., Petersen P.L. Rupture of the uterus in the 11th week of pregnancy. // Ugeskr. Laeger. 1982. — Vol. 144. — № 51. — P. 3836−3837.
  210. Heller C.L., Orti E., De Nicola A.F. Regulatory factors of glucocorticoid binding in early and term rat placenta. // J. Steroid Biochem. 1986. — Vol. 25. -№ l.-P. 53−58.
  211. Henderson T.A., Saunders P.T., Moffett-King A., Groome N.P., Critchley H.O. Steroid receptor expression in uterine natural killer cells. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2003. — Vol. 88. — № 1. — P. 440−449.
  212. Hesse U., Debus-Thiede G., Meier B., Schussler B. Nuclear magnetic resonance of the pelvic floor an expansion of the anatomic image. // Gynakol. Rundsch. — 1991. -Vol. 31. -Suppl. 2. -P. 312−313.
  213. Hetherington C.M., Humber D.P. The effect of pregnancy on lymph node weight in the mouse. // J. Immunogenet. 1977. — Vol. 4. — № 4. — P. 271−276.
  214. Ho C.K., Tetsuka M., Hillier S.G. Regulation of 1 lbeta-hydroxysteroid dehydrogenase isoforms and glucocorticoid receptor gene expression in the rat uterus. // J. Endocrinol. 1999. — Vol. 163. — № 3. — P. 425−431.
  215. Hofmann D., Scholz H. Rupture of the uterus. // Med. Klin. 1977. — Vol. 72. -№ 14.-P. 593−597.
  216. Howe R.S., Lee Y. IL, Fischkoff S.A., Teuscher C., Lyttle C.R. Glucocorticoid and progestin regulation of eosinophil chemotactic factor and complement C3 in the estrogen-treated rat uterus. // Endocrinology. 1990. — Vol. 126. — № 6. -P. 3193−3199.
  217. Hsu C.D., Chen S., Feng T.I., Johnson TR. Rupture of uterine scar with extensive maternal bladder laceration after cocaine abuse. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1992. — Vol. 167. — № 1. — P. 129−130.
  218. Izawa M., Satoh Y., Iwasaki K., Ichii S. Glucocorticoid receptor in the rat uterus. // Endocrinol. Jpn. 1984. — Vol. 31. — № 4. — P. 491−500.
  219. Johansson M., Bromfield J.J., Jasper M.J., Robertson S.A. Semen activates the female immune response during early pregnancy in mice. // Immunology. -2004. Vol. 112. — № 2. — P. 290−300.
  220. Johnston M., Elias R. The regulation of lymphatic pumping. // Lymphology. -1987. Vol. 20. — № 4. — P. 215−218.
  221. Joscfsson B. Studies on eosinophil granulocytes. V. Evidence against the role of histamine as a mediator of eosinophilia in the uterus of the rat. // Acta Endocrinol. (Copenh). 1968. — Vol. 58. — № 3. — P. 532−536.
  222. Kamel S., Wood G.W. Immunoregulatory activity of cells from lymph nodes draining the uterus of allopregnant mice. //J. Reprod. Immunol. 1990. — Vol. 17. — № 3. — P. 239−252.
  223. Kanadys W. Scar dehiscence after cesarean section. // Ginekol. Pol. 1979. -Vol. 50.-№ 8.-P. 713−715.
  224. Kaplan B., Royburt M., Peled Y., Hirsch M., Hod M., Ovadia Y., Neri A. Routine revision of uterine scar after prior cesarean section. // Acta Obstet. Gynecol. Scand. 1994. — Vol. 73. — № 6. — P. 473−475.
  225. Kapovic M., Rukavina D. Kinetics of lymphoproliferative responses of lymphocytes harvested from the uterine draining lymph nodes during pregnancy in rats. //J. Reprod. Immunol. -1991. Vol. 20. -№ 1. — P. 93−101.
  226. Kapovic M., Rukavina D. Reactivity to alloantigens and polyclonal mitogens and CD4+/CD8+ cell ratio shifts of cervical lymph node and spleen cells duringpregnancy in rats. // J. Reprod. Immunol. 1991. — Vol. 20. — № 2. — P. 165−174.
  227. Katayama M.L., Federico M.H., Brentani R.R., Brentani M.M. Eosinophil accumulation in rat uterus following estradiol administration is modulated by laminin and its integrin receptors. // Cell Adhes. Commun. 1998. — Vol. 5. — № 5. p. 409−424.
  228. Kawakami S., Togashi K., Sagoh T., Kimura I., Noguchi M., Takakura K., Mori T., Konishi J. Uterine deformity caused by surgery during pregnancy. // J. Comput. Assist. Tomogr. 1994. — Vol. 18. — № 2. — P. 272−274.
  229. Keirse M.J., Mingeot R.A. Dehiscent Caesarean section scar on hysterogra-phy. //Br. J. Radiol. 1974. — Vol. 47. -№ 555. — P. 191−192.
  230. Kelenyi G., Nemetli A. Tissue eosinophil leucocytes. II. Electron microscopy and histochemistry of the uterine eosinophil leucocytes in oestrogen-treated spayed rats. // Acta Biol. 1972. — Vol. 23. — № 3. — P. 253−267.
  231. Khan K.S., Rizvi A. The partograph in the management of labor following cesarean section. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1995. — Vol. 50. -№ 2. — P. 151−157.
  232. Kiss D., Gyorik J., Rajkovits K. Histological examination of uterus healing following cesarean section. // Zentralbl. Gynakol. 1978. — Vol. 100. — № 5. — P. 309−312.
  233. Kleissl H.P., Becker H., Falkert. Report on 21 uterine ruptures and the influence of single row uterotomy stitching on rupture prevention. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 1975. — Vol. 35. — № 7. — P. 533−538.
  234. Klemm P., Koehler C., Mangier M., Schneider U., Schneider A. Laparoscopic and vaginal repair of uterine scar dehiscence following cesarean section as detected by ultrasound. // J. Perinat. Med. 2005. — Vol. 33. — № 4. — P. 324−331.
  235. Knitza R., Scheidel P., Hepp H. Concealed rupture of the uterus during continuous epidural anaesthesia. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 1980. — Vol. 40. — № 7. — P. 652−653.
  236. Kolle-Frick M., Prinz W., Jonatha W.D. The course of labor following cesarean section with special reference to peridural anesthesia. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 1984. — Vol. 44. — № 3. — P. 146−149.
  237. Koob T.J., Jeffrey J.J., Eisen A.Z., Bauer E.A. Hormonal interactions in mammalian collagenase regulation. Comparative studies in human skin and rat uterus. // Biochim. Biophys. Acta. 1980. — Vol. 629. — № 1. — P. 13−23.
  238. Lai K., Tsomo P. Comparative study of single layer and conventional closure of uterine incision in cesarean section. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1988. — Vol. 27.-№ 3.-P. 349−352.
  239. Lanyi E. Changes of the uterine wall after caesarian section revealed by hys-terography. // Cesk. Gynekol. 1982. — Vol. 47. — № 6. — P. 408−410.
  240. Largueche S., Merieh S., El Ariane F., Rozier J.Y., Oueslati R., Hadj Salem H, Ben Amor M.S. 2 cases of post-cesarean utero-parietal fistula. // Tunis Med. -1978.-Vol. 56.1.-P. 71−74.
  241. Lauweryns J.M., Cornillie F.J. Topography and ultrastructure of the uterine lymphatics in the rat. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 1984. — Vol. 18. -№ 5−6.-P. 309−327.
  242. Lazarov L. Rupture of the uterine cicatrix in vaginal delivery after a prior cesarean section. II Akush. Ginekol. (Sofiia). 1990. — Vol. 29. — № 5. — P. 15−19.
  243. Lazarus E.J. Early rupture of the gravid uterus. // Am. J. Obstet. Gynecol. -1978.-Vol. 132.-№ 2.-P. 224.
  244. Lecuru F., Neji K., Robin F., Darles C., de Bievre P., Taurelle R. Lymphatic drainage of the uterus. Preliminary results of an experimental study. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1997. — Vol. 26. — № 4. — P. 418−423.
  245. Ledward R.S. Delivery after previous hysterotomy: twelve months experience at a peripheral hospital. // Br. J. Clin. Pract. 1974. — Vol. 28. — № 5. — P. 166 169.
  246. Lee Y.H., Howe R.S., Sha S.J., Teuscher C., Sheehan D.M., Lyttle C.R. Estrogen regulation of an eosinophil chemotactic factor in the immature rat uterus. // Endocrinology. 1989. — Vol. 125. — № 6. — P. 3022−3028.
  247. Leiva M.C., Xu Q., Galman M., Lyttle C.R. Ontogeny of the production of an estrogen-regulated eosinophil chemotactic factor in the rat uterus. // Biol. Reprod. 1991. — Vol. 45. — № 6. — P. 818−823.
  248. Leung A.S., Farmer R.M., Leung E.K., Medearis A.L., Paul R.H. Risk factors associated with uterine rupture during trial of labor after cesarean delivery: a case-control study. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1993. — Vol. 168. — № 5. — P. 1358−1363.
  249. Levrant S.G., Wingate M. Midtrimester uterine rupture. A case report. // J. Reprod. Med. 1996. — Vol. 41. -№ 3. — P. 186−190.
  250. Lierse W. The anatomy of the pelvis. // Rontgenblatter. 1990. — Vol. 43. — № 10. — P. 405−408.
  251. Ling C., Xu L. The prospective study of trial labor following previous cesarean section. //Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi. 1995. — Vol. 30. — № 12. — P. 721 723.
  252. Locatelli A., Regalia A.L., Ghidini A., Ciriello E., Biffi A., Pezzullo J.C. Risks of induction of labour in women with a uterine scar from previous low transverse caesarean section. // BJOG. 2004. — Vol. 111. — № 12. — P. 13 941 399.
  253. Lonky N.M., Worthen N., Ross M.G. Prediction of cesarean section scars with ultrasound imaging during pregnancy. //J. Ultrasound Med. 1989. — Vol. 8. — № 1. — P. 15−19.
  254. Lopez M., Castrillon M.A., Tchernitchin A.N. Colloidal carbon blocks oestrogen-induced migration of eosinophils to the uterus and the uterine water imbibition response. //J. Endocrinol. 1986. — Vol. 109. — № 1. — P. 89−95.
  255. Luque E.II., Munoz de Toro M.M., Ramos J.G., Rodriguez H.A., Sherwood
  256. O.D. Role of relaxin and estrogen in the control of eosinophilic invasion and collagen remodeling in rat cervical tissue at term. // Biol. Reprod. 1998. — Vol. 59. -№ 4. -P. 795−800.
  257. Lurie S., Hagay Z.} Goldschmit R., Insler V. Routine previous cesarean scar exploration following successful vaginal delivery. Is it necessary? // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 1992. — Vol. 45. -№ 3. — P. 185−186.
  258. Luzzani F., Gallico L., Glasser A. In vitro and ex vivo binding to uterine progestin receptors of the rat as a tool to assay progestational activity of glucocorticoids. // Methods Find Exp. Clin. Pharmacol. 1982. — Vol. 4. — № 4. — P. 237 242.
  259. Lynch J.C., Pardy J.P. Uterine rupture and scar dehiscence. A five-year survey. // Anaesth. Intensive Care. 1996. — Vol. 24. — № 6. — P. 699−704.
  260. Lyttle C.R., Medlock K.L., Sheehan D.M. Eosinophils as the source of uterine nuclear type II estrogen binding sites. // J. Biol. Chem. 1984. — Vol. 259. — № 5. — P. 2697−2700.
  261. Madsen P., Olsen C.E. Severe haemorrhage from the non-pregnant uterus as a result of cicatricial necrosis after cervical cacsarian section. // Acta Obstet. Gynecol. Scand. 1977. — Vol. 56. — № 5. — P. 535−537.
  262. Magnin P., Thoulon J.M. Hysterographic study of the uterus after cesarean section. (Apropos of 90 cases) I. Prognostic value of hysterography. // Gynecol. Obstet. (Paris). 1968. — Vol. 67. — № 1. — P. 119−136.
  263. Marcus S., Cheng E., Goff B. Extrauterine pregnancy resulting from early uterine rupture. // Obstet. Gynecol. 1999. — Vol. 94. — № 5. — Pt. 2. — P. 804 805.
  264. Maria N.E., Mishra N., Mubarek M., Reginald P.W. Silent dehiscence of a caesarean section scar with placenta pracvia accreta. // J. Obstet. Gynaecol. -2003.-Vol. 23.-№ 1.-P. 77.
  265. Markaverich B.M., Upchurch S., Clark J.H. Progesterone and dexamethasone antagonism of uterine growth: a role for a second nuclear binding site for estradiol in estrogen action. // J. Steroid Biochem. 1981. — Vol. 14. — № 2. — P. 125
  266. Markaverich B.M., Roberts R.R., Alejandro M.A., Clark J.H. Uterine type II estrogen-binding sites arc not of eosinophil origin. // J. Biol. Chem. 1986. -Vol. 261.-№ 1.-P. 142−146.
  267. Martin J.N. Jr, Perry K.G. Jr, Roberts W.E., Meydrech E.F. The case for trial of labor in the patient with a prior low-segment vertical cesarean incision. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1997. — Vol. 177. -№ 1. — P. 144−148.
  268. Mattsson R., Holmdahl R. Maintained allogeneic pregnancy in rats depleted of T cytotoxic/suppressor cells by 0X8 monoclonal antibody treatment. // J. Re-prod. Immunol. 1987. — Vol. 12. — № 1. — P. 23−34.
  269. McLean J.M., Mosley J.G., Gibbs A.C. Changes in the thymus, spleen and lymph nodes during pregnancy and lactation in the rat. // J. Anat. 1974. — Vol. 118.-Pt2.-P. 223−229.
  270. Medynski M., Stankiewicz S. Uterine scar an increasing obstetrical problem. //Wiad. Lek. — 1979. — Vol. 32. -№ 3. — P. 161−165.
  271. Meehan P.P., Moolgaoker A.S., Stallworthy J. Vaginal delivery under caudal analgesia after caesarean section and other major uterine surgery. // Br. Med. J. -1972. Vol. 2. — № 816. — P. 740−742.
  272. Meehan F.P., Burke G., Kehoe J.T., Magani I.M. True rupture/scar dehiscence in delivery following prior section. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1990. -Vol. 31.-№ 3.-P. 249−255.
  273. Mejia R., Escalona A., Cabello A., Videla S. Post-cesarean uterine scar. // Rev. Chil. Obstet. Ginecol. 1989. — Vol. 54. — № 5. — P. 307−309.
  274. Mena M.A., Grunert G., Mansilla M.S., Lucia M.E., Pizarro M.I., Hidalgo P.A., Tchernitchin A.N. Inhibition of non-genomic responses to oestrogen in the rat uterus by testosterone propionate. // J. Reprod. Fertil. 1985. — Vol. 74. — №l.-P. 1−7.
  275. Mcsleh R.A., Kurdi A.M., Ayoub H.S. Can the rate of cesarean section be reduced? // Saudi Med. J. 2000. — Vol. 21. -№ 11. — P. 1054−1058.
  276. Mishra A., Landzberg B.R., Parente J.T. Uterine rupture in association with alkaloidal («crack») cocaine abuse. //Am. J. Obstet. Gynecol. 1995. — Vol. 173. -№ l.-P. 243−244.
  277. Mislin II. The Lymphangion. // Lymphangiology. Stuttgart, New York: Schattauer, 1983. — Ch. 3. — P. 165−173.
  278. Molloy B.G., Sheil O., Duignan N.M. Delivery after caesarean section: review of 2176 consecutive cases. // Br. Med. J. (Clin. Res. Ed.). 1987. — Vol. 294.-№ 6588.-P. 1645−1647.
  279. Monteagudo A., Carreno C., Timor-Tritsch I.E. Saline infusion sonohystero-graphy in nonpregnant women with previous cesarean delivery: the «niche» in the scar. // J. Ultrasound Med. 2001. — Vol. 20. — № 10. — P. 1105−1115.
  280. Mora O.A., Sanchez-Criado J.E., Guisado S. Role of the vomeronasal organ on the estral cycle reduction by pheromones in the rat. // Rev. Esp. Fisiol. -1985. Vol. 41. — № 3. — P. 305−310.
  281. Morris H. Surgical pathology of the lower uterine segment caesarean section scar: is the scar a source of clinical symptoms? // Int. J. Gynecol. Pathol. 1995. -Vol. 14.-№ l.-P. 16−20.
  282. Mor-Yosef S., Zeevi D., Samueloff A., Donhin M., Frankfurter H., Schenker J.G. Vaginal delivery following one previous cesarean birth: nation wide survey. // Asia Oceania J. Obstet. Gynaecol. 1990. — Vol. 16. — № 1. — P. 33−37.
  283. Mor-Yosef S., Samueloff A., Schenker J.G. The Israel perinatal census. // Asia Oceania J. Obstet. Gynaecol. 1992. — Vol. 18. — № 2. — P. 139−145.
  284. Mosley J.G., McLean J.M., Gibbs A.C. The response of iliac lymph nodes tothe fetal allograft. // J. Anat. 1975. — Vol. 119. — Pt 3. — P. 619−623.
  285. Moutsatsou P., Sekeris C.E. Steroid receptors in the uterus: implications in endometriosis. // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2003. — Vol. 997. — P. 209−222.
  286. Mozurkewich E.L., Hutton E.K. Elective repeat cesarean delivery versus trial of labor: a meta-analysis of the literature from 1989 to 1999. // Am. J. Obstet. Gynecol. 2000. — Vol. 183. — № 5. — P. 1187−1197.
  287. Muller R., Kohler R., Schultze H., Wolansky D. A modified SarafoIT suture for closure of the uterine wound in Cesarean section. // Zentralbl. Gynakol. -1990. Vol. 112. -№ 13. — P. 803−809.
  288. Nayki U., Taner C.E., Mizrak T., Nayki C., Derin G. Uterine rupture during second trimester abortion with misoprostol. // Fetal Diagn. Ther. 2005. — Vol. 20.-№ 5.-P. 469−471.
  289. Neeser E., Niehues U., Hirsch H.A. Maternal morbidity following cesarean section. Comparison of istlimo-corpus longitudinal section and isthmian transverse section in premature labor. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 1988. — Vol. 48. — № 1. — P. 8−12.
  290. Negura A., Gavrilita L., Ardeleanu D. The trauma of the hysterotomy incision. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. 1988. — Vol. 83. — № 3. — P. 161−164.
  291. Negura-Marderos A., Gavrilita L., Ardeleanu D. Trauma of the edges of the uterine wound in Cesarean section, a factor which affects the quality of the cicatrix. // Rev. Med. Chir. Soc. Med. Nat. Iasi. 1977. — Vol. 81. — № 2. — P. 219 222.
  292. Newport A., Carter J. Changes in T and B lymphocyte populations in the lymph nodes draining the uterus in pregnant mice. // J. Reprod. Fertil. 1983. -Vol. 67.-№ 2.-P. 433−440.
  293. Nielsen T.F., Ljungblad U., Hagberg II. Rupture and dehiscence of cesareansection scar during pregnancy and delivery. //Am. J. Obstet. Gynecol. 1989. -Vol. 160. -№ 3. — P. 569−573.
  294. Ofir K., Sheiner E., Levy A., Katz M., Mazor M. Uterine rupture: risk factors and pregnancy outcome. // Am. J. Obstet. Gynecol. 2003. — Vol. 189. — № 4. -P. 1042−1046.
  295. Ofir K., Sheiner E., Levy A., Katz M., Mazor M. Uterine rupture: differences between a scarred and an unscarred uterus. // Am. J. Obstet. Gynecol. 2004. -Vol. 191.-№ 2.-P. 425−429.
  296. Onoyama S., Ichii S. Nuclear binding sites in the liver for dexametliasone and in the ventral prostate for R1881. // Endocrinol. Jpn. 1982. — Vol. 29. — № 3. -P. 349−356.
  297. Ottolenghi A. The relationship between eosinophilic leukocytes and phos-pholipase B activity in some rat tissues. // Lipids. 1970. — Vol. 5. — № 6. — P. 531−538.
  298. Palliez R., Dubois R., Delecour M., Monnier J.C., Flipo B., Begueri F. Hys-terographic study of the cesarean sectioned uterus: 56 cases. // Bull. Fed. Soc. Gynecol. Obstet. Lang. Fr. 1969. — Vol. 21. — № 1. — P. 48−50.
  299. Panko W.B., Clark J.H., Walters M.R. Glucocorticoid receptors: documentation in the rat uterus. // J. Recept. Res. 1981. — Vol. 2. — № 1. — P. 29−45.
  300. Paraskevaides E., Stuart B., Gardeil F. Secondary postpartum haemorrhage from nondehisced lower caesarean section scar: a case for hysteroscopy. // Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. 1993. — Vol. 33. — № 4. — P. 427.
  301. Parmiani G., Invemizzi G. Depression of cellular immune response during syngeneic pregnancy as measured by the graft-versus-host reaction. // Transplantation. 1975. — Vol. 19. — № 5. — P. 363−368.
  302. Paul K.G., Kumlien A., Brody S. Studies on eosinophil granulocytes. II. The effect of cytostatics on the uterine response to oestrogen. // Experientia. 1966. -Vol. 22.-№ 12.-P. 799−800.
  303. Paul K.G., Kumlien A., Jakobsson S., Brody S. Eosinophil granulocytes. I. Identification of the uterus peroxidase. // Scand. J. Clin. Lab. Invest. 1967. -Vol. 20.-№ l.-P. 11−16.
  304. Paul R.H., Miller D.A. Cesarean birth: how to reduce the rate. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1995. — Vol. 172. — № 6. — P. 1903−1907- discussion 1907−1911.
  305. Pellerin M., Colau J.C., Rebibo G., Savey L. An MRI study of the normal pelvis in the immediate postpartum period. //J. Radiol. 1999. — Vol. 80. — № 6. — P. 579−584.
  306. Perez M.C., Furth E.E., Matzumura P.D., Lyttle C.R. Role of eosinophils in uterine responses to estrogen. // Biol. Reprod. 1996. — Vol. 54. — № 1. — P. 249 254.
  307. Perrotin F., Marret H., Fignon A., Body G., Lansac J. Scarred uterus: is routine exploration of the cesarean scar after vaginal birth always necessary? // J. r
  308. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1999. — Vol. 28. — № 3. — P. 253−262.
  309. Petrikovsky B. Intrapartum hysteroscopy. //Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. -1986. Vol. 26. — № 4. — P. 249−250.
  310. Petrikovsky B.M. Intrapartum fetoscopy: technique and indications. // Endoscopy. 1988. — Vol. 20. — № 4. — P. 142−143.
  311. Petrikovsky B.M. Endoscopic assessment of the integrity of the postcesarean uterine wall before a trial of labor. Transcervical Endoscopy Registry. // J. Reprod. Med. 1994. — Vol. 39. — № 6. — P. 464−466.
  312. Phelan J.P., Clark S.L., Diaz F., Paul R.H. Vaginal birth after cesarean. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1987. -Vol. 157. -№ 6. -P. 1510−1515.
  313. Phelan J.P., Korst L.M., Settles D.K. Uterine activity patterns in uterine rupture: a case-control study. // Obstet. Gynecol. 1998. — Vol. 92. — № 3. — P. 394 397.
  314. Philippe 11. J., Karanouh S., Rozenberg P., Dien D.T., Nisand I. Transvaginalsurgery for uterine scar dehiscence. // Eur. J. Obstet, Gynecol. Reprod. Biol. -1997. Vol. 73. — № 2. — P. 135−138.
  315. Picaud A., Nlomc-Nzc A.R., OgowctN., Engongah T., Ella-Ekogha R. Delivery in the scarred uterus. Apropos of 606 cases in 62,193 deliveries. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. 1990. — Vol. 85. — № 6. — P. 387−392.
  316. Pridjian G. Labor after prior cesarean section. // Clin. Obstet. Gynecol. -1992. Vol. 35. — № 3. — P. 445−456.
  317. Prochorow M., Lazar W. Pattern of the scar in the lower segment of the uterus following cesarean section. // Ginekol. Pol. -1971. Vol. 43. — № 1. — P. 43−50.
  318. Pruett K.M., Kirshon B., Cotton D.B. Unknown uterine scar and trial of labor. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1988. — Vol. 159. — № 4. — P. 807−810.
  319. Rabin D.S., Johnson E.O., Brandon D.D., Liapi C., Chrousos G.P. Glucocorticoids inhibit estradiol-mediated uterine growth: possible role of the uterine estradiol receptor. // Biol. Reprod. 1990. — Vol. 42. — № 1. — P. 74−80.
  320. Rachagan S.P., Raman S., Balasundram G., Balakrishnan S. Rupture of the pregnant uterus a 21-year review. // Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. — 1991. -Vol. 31.-№ 1.-P. 37−40.
  321. Rakliim A.U. Hysterography following repeated cesarean section. // Akush. Ginekol. (Sofiia). 1976. — Vol. 15. -№ 5. — P. 332−336.
  322. Ramos J.G., Varayoud J., Kass L., Rodriguez H., Munoz de Toro M., Montcs G.S., Luque E.H. Estrogen and progesterone modulation of eosinophilic infiltration of the rat uterine cervix. // Steroids. 2000. — Vol. 65. — № 7. — P. 409−414.
  323. Ranzinger M., Fuentes A., Smyk L.V. Spontaneous rupture of a low transverse cesarean scar. // South. Med. J. 1994. — Vol. 87. — № 10. — P. 1001−1002.
  324. Rashmi, Radhakrisknan G., Vaid N.B., Agarwal N. Rupture uterus changing Indian scenario. // J. Indian Med. Assoc. — 2001. — Vol. 99. — № 11. — P. 634−637.
  325. Raskin K.S., Dacliauer J.D., Docdcn A.L., Rayburn W.F. Uterine rupture after use of a prostaglandin E2 vaginal insert during vaginal birth after cesarean. A report of two cases. // J. Rcprod. Med. 1999. — Vol. 44. — № 6. — P. 571−574.
  326. Regnard C., Nosbusch M., Fellemans C., Benali N., van Rysselberghe M., Barlow P., Rozenberg S. Cesarean section scar evaluation by saline contrast sonohysterography. // Ultrasound Obstet. Gynecol. 2004. — Vol. 23. — № 3. — P. 289−292.
  327. Rhen T., Grissom S., Afshari C., Cidlovvski J.A. Dexametliasone blocks tlie rapid biological effects of 17beta-estradiol in the rat uterus without antagonizing its global genomic actions. // FASEB J. 2003. — Vol. 17. — № 13. — P. 18 491 870.
  328. Roberts R.G., Bell H.S., Wall E.M., Moy J.G., Hess G.H., Bovver H.P. Trial of labor or repeated cesarean section. The woman’s choice. // Arch. Fam. Med. -1997.-Vol. 6,-№ 2.-P. 120−125.
  329. Robertson S.A., Mau V.J., Young I.G., Matthaei K.I. Uterine eosinophils and reproductive performance in interleukin 5-deficient mice. // J. Reprod. Fertil. -2000. Vol. 120. — № 2. — P. 423−432.
  330. Rojas A.M., Steinsapir J. Multiple mechanisms of regulation of estrogen action in the rat uterus: effects of insulin. // Endocrinology. 1983. — Vol. 112. — № 2.-P. 586−591.
  331. Ross R., Klebanoff S.J. The eosinophilic leukocyte. Fine structure studies of changes in the uterus during the estrous cycle. // J. Exp. Med. 1966. — Vol. 124. — № 4. — P. 653−660.
  332. Rouzi A.A., Hawaswi A.A., Aboalazm M., Hassanain F., Sindi O. Uterine rupture incidence, risk factors, and outcome. // Saudi Med. J. 2003. — Vol. 24.l.-P. 37−39.
  333. Rozenberg P., Goffinet F., Phillippe H.J., Nisand I. Ultrasonographic measurement of lower uterine segment to assess risk of defects of scarred uterus. // Lancet. 1996. — Vol. 347. — № 8997. — P. 281−284.
  334. Rozenberg P., Goffinet F., Philippe H.J., Nisand I. Echographic measurement of the inferior uterine segment for assessing the risk of uterine rupture. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1997. — Vol. 26. — № 5. — P. 513−519.
  335. Rozenberg P., Goffinet F., Philippe H.J., Nisand I. Thickness of the lower uterine segment: its influence in the management of patients with previous cesarean sections. //Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 1999. — Vol. 87. — № l.-P. 39−45.
  336. Rudigoz R.C., Chardon C. Cesarean section in 1988. Obstetrical problems posed by the scarred uterus. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. 1990. — Vol. 85. — № 2. -P. 105−108.
  337. Ruiz-Velasco V., Gongora-Lopez P., Rosas-Arceo J., Rio De La Loza F. Study of the cicatrization of the pregnant uterus. // Ginecol. Obstet. Mex. 1968. -Vol. 24.-№ 141.-P. 15−35.
  338. Ruiz-Velasco V., Rosas-Arceo J. Evaluation of the cesarean section cicatrix. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. 1971. — Vol. 66. — № 2. — P. 83−93.
  339. Russell A.J., Hewlett P.M. A hysterographic study of the abdominal hysterotomy scar. // J. Obstet. Gynaecol. Br. Commonw. 1969. — Vol. 76. — № 8. — P. 721−723.
  340. Sasaki K., Ito T. Effects of pregnancy and lactation on the peripheral lymphatic tissue in the mouse: qualitative and quantitative morphology. // Arch. Histol. Jpn. 1980. — Vol. 43. — № 5. — P. 423−436.
  341. Satli M.A., Aron C. New data on olfactory control of estral receptivity of female rats. // C. R. Acad. Sci. Hebd. Seances Acad. Sci. D. 1976. — Vol. 282. -№ 9. — P. 875−877.
  342. Schneider D., Bukovsky I., Caspi E. Safety of midtrimester pregnancy termination by laminaria and evacuation in patients with previous cesarean section. //Am. J. Obstet. Gynecol. 1994. — Vol. 171. -№ 2. — P. 554−557.
  343. Schneider G. Palpation of the uterine scar after vaginal delivery. // CMAJ. -1989.-Vol. 141.-№ 2.-P. 98.
  344. Schubert A.K. Effects of progesterone antagonists on the eosinophilic granulocytes in the rat uterus. // Anat. Anz. 1998. — Vol. 180. — № 5. — P. 401−408.
  345. Scioscia M., Pontrelli G., Vimercati A., Santamato S., Selvaggi L. A short-scheme protocol of gemeprost for midtrimester termination of pregnancy with uterine scar. // Contraception. 2005. — Vol. 71. — № 3. — P. 193−196.
  346. Sebhatu B. An experience with trial of scar in 66 Ethiopian women. // East. Afr. Med. J. 1994. — Vol. 71. — № 10. — P. 676−678.
  347. Seewald H.J., Stecli D., Wetzel E. Hysterographic examinations following cesarean section. // Zentralbl. Gynakol. 1973. — Vol. 95. -№ 37. — P. 1297−1301.
  348. Segal D., Marcus-Braun N., Katz M. Extrusion of fetus into the abdominal cavity following complete rupture of uterus: a case report. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2003. — Vol. 109. — № 1. — P. 110−111.
  349. Sen S., Malik S., Salhan S. Ultrasonographic evaluation of lower uterine segment thickness in patients of previous cesarean section. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 2004. — Vol. 87. — № 3. — P. 215−219.
  350. Sferruzzi-Perri A.N., Robertson S.A., Dent L.A. Interleukin-5 transgene expression and eosinophilia are associated with retarded mammary gland development in mice. // Biol. Reprod. 2003. — Vol. 69. — № 1. — P. 224−233.
  351. Shimonovitz S., Botosneano A., Ilochner-Celnikier D. Successful first vaginal birth after cesarean section: a predictor of reduced risk for uterine rupture in subsequent deliveries. // Isr. Med. Assoc. J. 2000. — Vol. 2. — № 7. — P. 526−528.
  352. Silberstein T., Wiznitzer A., Katz M., Friger M., Mazor M. Routine revision of uterine scar after cesarean section: has it ever been necessary? // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 1998. — Vol. 78. — № 1. — P. 29−32.
  353. Singhal S.R., Agarwal U., Sangwan K., Kliosla A., Singhal S. Intrapartum posterior uterine wall rupture in lower segment cesarean section scarred uterus. // Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2005. — Vol. 84. — № 2. — P. 196−197.
  354. Sirbu P., Vasiliu C., Goranov M. Uterine cicatrix after cesarean sections. Radiological study. //J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1972. — Vol. 1. — № 6. — P. 563−574.
  355. Soto J., Tchernitchin A.N., Poloni P., Voigt G., Caro B., Agurto M. Effect of ketotifen on the distribution and degranulation of uterine eosinophils in estrogen-treated rats. // Agents Actions. 1989. — Vol. 28. — № 3−4. — P. 198−203.
  356. Spencer F., Chi L., Zhu M.X. Dexamethasone-induced changes in endometrial growth and inducible nitric oxide synthase during dccidualization in rats. // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 1998. — Vol. 25. — № 3−4. — P. 240−245.
  357. Steinsapir J., Rojas A.M., Alarcon O., Tchernitchin A.N. Effect of insulin andepinephrine on some early oestrogenic responses in the rat uterus. // Acta Endocrinol. (Copenh). 1982. — Vol. 99. — № 2. — P. 263−271.
  358. Stcinsapir J., Rojas A.M., Mcna M., Tchemitchin A.N. Effects of thyroid hormone on some uterine responses to estrogen. // Endocrinology. 1982. — Vol. 110.-№ 5.-P. 1773−1779.
  359. Steinsapir J., Rojas A.M., Tchemitchin A. Theophylline-estrogen interaction in the rat uterus: role of the ovary. // Am. J. Physiol. 1982. — Vol. 242. — № 2. -P. E121-E126.
  360. Stewart K.S., Evans T.W. Recurrent bleeding from the lower segment scar a late complication of Caesarean section, // Br. J. Obstet. Gynaecol. — 1975. — Vol. 82. — № 8. — P. 682−686.
  361. Stewart P.J., Zaloudek C.J., Inman M.M., Webster R.A. Effects of dexa-methasone and indomethacin on estrogen-induced uterine growth. // Life Sci. -1983. Vol. 33. — № 23. — P. 2349−2356.
  362. Stone J., Lockwood C.J., Berkovvitz G.S., Lynch L., Alvarez M., Lapinski R.H., Berkovvitz R.L. Morbidity of failed labor in patients with prior cesarean section. //Am. J. Obstet. Gynecol. 1992. — Vol. 167. -№ 6. — P. 1513−1517.
  363. Stone J.L., Lockwood C.J., Berkovvitz G., Alvarez M., Lapinski R., Valca-monico A., Berkovvitz R.L. Use of cervical prostaglandin E2 gel in patients with previous cesarean section. // Am. J. Perinatol. 1994. — Vol. 11. — № 4. — P. 309 312.
  364. Sturgis S.H., Velardo J.T. Antagonism of glucocorticoids and ACTH on estradiol 17beta induced uterine growth. // Surg. Forum. 1956. — Vol. 6. — № 1955.-P. 457−462.
  365. Sulila P., Lundkvist U., Mattsson R. Effects of pseudopregnancy on immu-noglobulin-secreting cells in mice. //J. Reprod. Immunol. 1988. — Vol. 13. — № 2.-P. 175−182.
  366. Sulila P., Mattsson R. Humoral immune activity in CBA/Ca mice during late pregnancy and the post-partum period. // J. Rcprod. Immunol. 1990. — Vol. 18. — № 3. — P. 259−269.
  367. Suzuki K., Tomasi T. B Jr. Immune responses during pregnancy. Evidence of suppressor cells for splenic antibody response. // J. Exp. Med. 1979. — Vol. 150.-№ 4.-P. 898−908.
  368. Tchernitchin A. Fine structure of rat uterine eosinophils and the possible role of eosinophils in the mechanism of estrogen action. // J. Steroid Biochem. -1973. Vol. 4. — № 3. — P. 277−282.
  369. Tchernitchin A., Roorijck J., Tchernitchin X., Vandenhende J., Galand F. Dramatic early increase in uterine eosinophils after oestrogen administration. // Nature. 1974. — Vol. 248. — № 444. — P. 142−143.
  370. Tchernitchin A., Rooryck J., Tchernitchin X., Vandenhende J., Galand P. Effects of Cortisol on uterine eosinophilia and other oestrogenic responses. // Mol. Cell Endocrinol. 1975. — Vol. 2. — № 5. — P. 331−337.
  371. Tchernitchin A., Tchernitchin X., Galand P. Correlation of estrogen-induced uterine eosinophilia with other parameters of estrogen stimulation, produced with estradiol-17beta and estriol. // Experientia. 1975. — Vol. 31. — № 8. — P. 993−994.
  372. Tchernitchin A., Tchernitchin X., Robel P., Baulieu E.E. The binding of estradiol to human polynuclear eosinophilic leukocytes // C. R. Acad. Sci. Hebd. Seances Acad. Sci. D. 1975. — Vol. 280. — № 12. — P. 1477−1480.
  373. Tchernitchin A., Tchernitchin X., Galand P. New concepts on the action of oestrogens in the uterus and the role of the eosinophil receptor system. // Differentiation. 1976. — Vol. 5. — № 2−3. — P. 145−150.
  374. Tchernitchin A., Tchernitchin X., Rodriguez A., Mena M.A., Unda C., Mairesse N., Galand P. EfTect of propranolol on various parameters of estrogen stimulation in the rat uterus. // Experientia. 1977. — Vol. 33. — № 11. — P. 15 361 537.
  375. Tchernitchin A.N. Eosinophil-mediated non-genomic parameters of estrogen stimulation a separate group of responses mediated by an independent mechanism. //J. Steroid Biochem. — 1983. — Vol. 19. — № 1A. — P. 95−100.
  376. Tchernitchin A.N., Galand P. Oestrogen levels in the blood, not in the uterus, determine uterine eosinophilia and oedema. // J. Endocrinol. 1983. — Vol. 99, -№ l.-P. 123−130.
  377. Tchernitchin A.N., Barrera J., Arroyo P., Mena M.A., Vilches K., Grunert G. Degranulatory action of estradiol on blood eosinophil leukocytes in vivo and in vitro. //Agents Actions. 1985. — Vol. 17. — № 1. — P. 60−66.
  378. Tchernitchin X., Tchernitchin A., Galand P. Dynamics of eosinophils in the uterus after oestrogen administration. // Differentiation. 1976. — Vol. 5. — № 23.-P. 151−154.
  379. Terada N., Yamane T., Matsumoto K., Asai H., Kitamura Y. Estrogen-induced increase in eosinophil number and peroxidase activity in uterus of genetically mast cell-deficient W/Wv mice. // Biol. Reprod. 1985. — Vol. 33. — № 4.-P. 899−901.
  380. Terada N., Yamamoto R., Yamamoto T., Nishizavva Y, Taniguchi II., Tera-kavva N., Kitamura Y., Matsumoto K. Effect of dexamethasone on uterine cell death.//J. Steroid Biochem. Mot. Biol. 1991. — Vol. 38.-№ l.-P. 111−115.
  381. Tischendorf D. The single-layer uterine suture in cesarean section. A comparative study. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 1987. — Vol. 47. — № 2. — P. 117 120.
  382. Tomialovvicz M., Floijanski J., Zimmer M. The use of oxytocin and prostaglandin in pregnancies after cesarean delivery or uterine surgery. // Ginekol. Pol. 2000. — Vol. 71. — № 4. — P. 242−246.
  383. Tucker J.M., Ilauth J.C., Ilodgkins P., Owen J., Winkler C.L. Trial of laborafter a one- or two-layer closure of a low transverse uterine incision. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1993. — Vol. 168. — № 2. — P. 545−546.
  384. Twickler D.M., Lucas M.J., Balis A.B., Santos-Ramos R,. Martin L., Malone S., Rogers B. Color flow mapping for myometrial invasion in women with a prior cesarean delivery. // J. Matern. Fetal. Med. 2000. — Vol. 9. — № 6. — P. 330−335.
  385. Uzoigwe S.A., Fiebai P.O., MacPepple D.A. Spontaneous midtrimester uterine rupture: a case report. //Niger J. Med. 2004. — Vol. 13. — № 3. — P. 290−292.
  386. Valle R.F., Sciarra J.J. Hysteroscopy: a useful diagnostic adjunct in gynecology. //Am. J. Obstet. Gynecol. 1975. — Vol. 122. — № 2. — P. 230−235.
  387. Van Vugt P.J. The protrusions from the cervical canal at the scar of a previous cesarean section. // Acta Obstet. Gynecol. Scand. 1979. — Vol. 58. — № 4. — P. 327−334.
  388. Vause S., Macintosh M. Evidence based case report: use of prostaglandins to induce labour in women with a caesarean section scar. // BMJ. 1999. — Vol. 318. -№ 7190. — P. 1056−1058.
  389. Vedat A., Hasan B., Ismail A. Rupture of the uterus in labor: a review of 150 cases. // Isr. J. Med. Sci. 1993. — Vol. 29. — № 10. — P. 639−643.
  390. Veridiano N.P., Lopes J., Ohm H.K., Tancer M.L. Placenta percreta as a cause of uterine perforation during abortion. A case report. // J. Reprod. Med. -1986.-Vol. 31.-№ 11.-P. 1049−1050.
  391. Waidl E. Multiple cesarean section. // Med. Klin. 1966. — Vol. 61. — № 24. -P. 941−945.
  392. Wang F., Riley J.C., Behrman H.R. Immunosuppressive levels of glucocorticoid block extrauterine luteolysins in the rat. // Biol. Reprod. 1993. — Vol. 49. -№ 1.-P. 66−73.
  393. Wang P.H., Yuan C.C., Chao H.T., Yang M.J., Ng H.T. Posterior uterine wall rupture during labour. // Hum. Reprod. 2000. — Vol. 15. — № 5. — P. 1198−1199.
  394. Waniorek A. Hysterography after cesarean section for evaluation of suturing technic. // Obstet. Gynecol. 1967. — Vol. 29. — № 2. — P. 192−199.
  395. Waniorek A. Segmental transverse cicatrix. Study of nonpregnant uterine specimens. //J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1972. — Vol. 1. — № 5. -P. 457−467.
  396. Waniorek A. Study of the different technics of repairing hysterotomy. (Experimental study on pregnant and non pregnant animals). // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1972. — Vol. 1. — № 2. — P. 167−178.
  397. Wasef W.R. An audit of trial of labour after previous caesarean section. // J. Obstet. Gynaecol. 2000. — Vol. 20. — № 4. — P. 380−381.
  398. Webb J.C., Gilson G., Gordon L. Late second stage rupture of the uterus and bladder with vaginal birth after cesarean section: a case report and review of the literature. // J. Matern. Fetal. Med. 2000. — Vol. 9. — № 6. — P. 362−365.
  399. Wehbe A., Lechaux J.P., loan A. Rupture of a scarred gravid uterus at 28 weeks of amenorrhea. Conservative surgical management and results. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. 1994. — Vol. 89. -№ 3. — P. 137−141.
  400. Weibel E.R. Stereological methods. London: Academic Press, 1979. 415 p.
  401. Weidenbach A., Wallner H. Diagnosis and surgical treatment of abdominal wall fistula following abdominal cesarean section. // Zentralbl. Gynakol. 1972. -Vol. 94. — № 2. — P. 70−72.
  402. Witte M.N., Witte C.L. Lymphangiogenesis and lymphologic syndroms. // Lymphology. 1986. — Vol. 19. — № 1. — P. 21−28.
  403. Witte M.N., Witte C.L. Lymphatics and blood vessels, lymphangiogenesis and hemangiogenesis: from cell biology to clinical medicine. // Lymphology. -1987. Vol. 20. — № 4. — P. 257−266.
  404. Wojdecki J., Grynsztajn A. Scar formation in the uterus after cesarean section. //Am. J. Obstet. Gynecol. 1970. — Vol. 107. -№ 2. — P. 322−324.
  405. Xu Q., Leiva M.C., Fischkoff S.A., I landschumacher R.E., Lyttle C.R. Leukocytc chemotactic activity of cyclophilin. //J. Biol. Chcm. 1992. — Vol. 267. -№ 17.-P. 11 968−11 971.
  406. Yap O.W., Kim E.S., Laros R.K. Jr. Maternal and neonatal outcomes after uterine rupture in labor. // Am. J. Obstet. Gynecol. 2001. — Vol. 184. — № 7. — P. 1576−1581.
  407. Yilmazturk A., Schluter W. Manual palpation of the uterine scar following vaginal delivery in previous cesarean section is it really necessary? // Zentralbl. Gynakol. — 1991. — Vol. 113. -№ 13. — P. 773−775.
  408. Zabransky F. The cesarean section scar and subsequent labor. II. Criteria for subsequent vaginal delivery- risk factors for uterine rupture. // Ceska Gynekol. -1994. Vol. 59. — № 6. — P. 321−323.
  409. Zabransky F. The cesarean section scar and subsequent labor. III. Revision of the uterus possibilities of ultrasonography in the early puerperium — an algorithm for management of labor. // Ceska Gynekol. — 1995. — Vol. 60. — № 2. — P. 93−94.
  410. Zelop C.M., Shipp T.D., Rcpke J.T., Cohen A., Caughey A.B., Lieberman E. Uterine rupture during induced or augmented labor in gravid women with one prior cesarean delivery. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1999. — Vol. 181. — № 4. — P. 882−886.
  411. Zelop C.M., Shipp T.D., Repke J.T., Cohen A., Lieberman E. Effect of previous vaginal delivery on the risk of uterine rupture during a subsequent trial of labor.//Am. J. Obstet. Gynecol. 2000. — Vol. 183.-№ 5.-P. 1184−1186.
  412. Zelop C.M., Shipp T.D., Cohen A., Repke J.T., Lieberman E. Trial of labor after 40 weeks' gestation in women with prior cesarean. // Obstet. Gynecol. -2001. Vol. 97. — № 3. — P. 391−393.
  413. Zhang J., Lathbury L.J., Salamonsen L.A. Expression of the chemokine eo-taxin and its receptor, CCR3, in human endometrium. // Biol. Reprod. 2000. -Vol. 62.-№ 2.-P. 404−411.
  414. Zhou M., Mellor A.L. Expanded cohorts of maternal CD8+ T-cells specific for paternal MIIC class I accumulate during pregnancy. // J. Reprod. Immunol.1998. Vol. 40. — № 1. — P. 47−62.
  415. Ziadeh S.M., El-Jallad M.F., Sunn’a E.T. Obstetric uterine rupture: a four-year clinical analysis. // Gynecol. Obstet. Invest. 1999. — Vol. 48. — № 3. — P. 176 178.
  416. Zimmer E.Z., Bardin R., Tamir A., Bronshtein M. Sonographic imaging of cervical scars after Cesarean section. // Ultrasound Obstet. Gynecol. 2004. -Vol. 32.-№ 6.-P. 594−598.
  417. Zorlu C.G., Danisman N., Caglar T., Turan C., Isik A.Z., Kaleli B., Gokmen O. Vaginal birth following unmonitored labor in patients with prior cesarean section. // Gynecol. Obstet. Invest. 1996. — Vol. 42. — № 4. — P. 222−226.
Заполнить форму текущей работой

Сдать сессию!