Диагностика дисбактериоза. 
Микробиологическая диагностика и специфическая профилактика кишечных инфекций

Посевы изучают на наличие патогенных микроорганизмов и на нарушение соотношения различных видов микробов. Результаты исследования следует считать объективными при анализе роста изолированных колоний в том числе, если можно изучить морфологию и подсчитать количество колоний на чашку Петри. После идентификации проводят пересчет содержания микроорганизмов каждого вида на 1 г исследуемого материала. При обнаружении патогенной микрофлоры необходимо изучить ее чувствительность к антибактериальным препаратам и бактериофагам.

Отбор и доставка материала на дисбактериоз Материалом для исследования является кал не позже 2 часов после дефекации.

Для получения достоверного результата стул должен быть обязательно утренним, самостоятельным, не на фоне лечения. У грудных детей забирать материал не с памперсов и пеленок.

Одну столовую ложку фекалий помещают в прокипяченную стеклянную баночку.

Лабораторная диагностика дисбактериоза кишечника Метод исследования — бактериологический: мерный посев исследуемого материала с целью определения количества микроорганизмов наиболее значимых групп.

Этапы исследования:

• *приготовление серийных разведений суспензии испражнений;
• *посев на питательные среды из разведений;
• *учет результатов посева и ориентировочная идентификация микроорганизмов;
• *оценка результатов.

На первом этапе 1 грамм нативных фекалий растирают в ступке с 9 мл физ.растовора. из этого разведения делают посев на плотные питательные среды (среда Плоскирева или Левина). Одновременно делают массивный посев нативного кала на жидкие среды обогащения (Мюллера, селенитовая).Из основного разведения 1:10 делают дополнительные 100-кратные, затем вносят по 1 мл на среды (Эндо, Левина) и.

0,01 мл на 3−5% кровяной агар. Для получения роста изоллированных, доступных для счета колоний, применяют стеклянные бусы. Стерилизованные бусинки опускают в чашку с посевным материалом, при лёгком покачивании чашки с бусами в течении 1 мин материал равномерно распределяется по питательной среде. Посев бусами начинают с кровяного агара, затем бусы переносят на чашки с другими средами, все седы помещают в термостат (37 гр., 24 ч) На втором этапе на среде Эндо посчитывают число и процент лактозонегативных бесцветных колоний (по отношению ко всему числу выросших колоний). Колонии со слабовыраженными ферментативными свойствами (слабое разложение лактозы-розовые колонии) подсчитывают по отношению к общему числу колоний. С чашек со средами (Эндо, Левина, Плоскирева) выделяют не менее 4−5 колоний отличающихся по морфологии окраски. Пересевают на среды Реселла или на среду Олькеницкого, а так же в пробирку с бульоном, под пробку которой подвешена индикаторная бумажка для определения индола. В дальнейшем лактозонегативные культуры изучают прежде всего в отношении энтеробактерий (33 вопрос) Рост микробов рода Протея характеризуется разложением мочевины и окрашиванием среду Ресселя фиолетово-коричневый цвет. Необходимо делать расчеты всех микроорганизмов, входящих в состав микрофлоры. Определить чувствительность к антибиотикам.