Бакалавр
Дипломные и курсовые на заказ

Изучение стабильности экспрессии чужеродных генов у трансгенных растений табака (Nicotiana tabacum L.)

Диссертация: Изучение стабильности экспрессии чужеродных генов у трансгенных растений табака (Nicotiana tabacum L.)
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Для изучения наследования и стабильности экспрессии чужеродных генов были выделены модельные линии трансгенных растений табака: 1) трансгенные растения с одиночными и множественными вставками Т-ДНК- 2) трансформанты, имеющие в геноме Т-ДНК инсерцию с дупликацией гена uidA и одной копией гена nptll- 3) трансгенное растение табака Nu 21 с мозаичным характером проявления экспрессии маркерного гена… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Получение трансгенных растений: общие сведения
    • 1. 2. Наследование чужеродных генов и вариабельность их экспрессии у трансгенных растений
    • 1. 3. Инактивация чужеродных генов в растительном геноме
    • 1. 4. Молекулярно-генетические механизмы инактивации чужеродной ДНК в ядерном геноме трансгенных растений
      • 1. 4. 1. Структура и местоположение экзогенной ДНК в растительном геноме
      • 1. 4. 2. Замолкание экспрессии трансгена и модификация ДНК
      • 1. 4. 3. Мутации растительных генов, влияющих на процесс инактивации экспрессии чужеродной ДНК
    • 1. 5. Примеры инактивации экспрессии множественных копий собственных растительных генов
    • 1. 6. Инактивация экспрессии множественных копий генов у грибов-аскомицетов
    • 1. 7. Использование феномена инактивации экспрессии множественных копий генов для целенаправленного выключения экспрессии растительных генов
    • 1. 8. Стратегия предотвращения инактивации целевых генов в трансформированных растениях
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Получение транс генных растений табака
    • 2. 2. Типы генетических конструкций
    • 2. 3. Гибридологический анализ трансгенных растений табака
    • 2. 4. Определение активности неомицинфосфотрансферазы II in situ
    • 2. 5. Флуориметрическое определение активности p-глюкуронидазы в листьях трансгенных растений табака
    • 2. 6. Выделение геномной ДНК из листьев табака
    • 2. 7. Саузерн блот гибридизация геномной ДНК трансгенных растений табака
    • 2. 8. Выделение РНК из растительной ткани и точечный Нозерн блотгинг
    • 2. 9. Подтверждение наличия дупликаций в области инсерции Т-ДНК с помощью метода ПЦР
    • 2. 10. Проверка исходных трансформантов на присутствие в растительном геноме векторных последовательностей с помощью метода ПЦР
    • 2. 11. Электрофоретический анализ ДНК
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Стабильность экспрессии маркерного гена nptll у гибридов от скрещивания трансгенных растений табака с одной инсерцией Т-ДНК
    • 3. 2. Анализ стабильности наследования гена nptll у трансгенных растений табака со множественными инсерциями Т-ДНК
    • 3. 3. Моделирование влияния дупликации в структуре Т-ДНК на стабильность экспрессии маркерных генов nptll и uidA в трансгенных растениях табака

    3.3.1 Сравнительный анализ стабильности экспрессии гена nptll в первом и втором поколениях от самоопыления трансгенных растений табака (с одной копией гена uidA и с дупликациями данного гена в составе Т-области).

    3.3.2 Анализ активности ферментов (З-глюкуронидазы и NPTII в двух группах трансгенных растений табака (с одной копией гена uidA и прямой дупликацией данного гена).

    3.3.3 Анализ стабильности экспрессии гена nptll у гибридов Fj от различных типов скрещиваний.

    3.3.4 Встраивание векторных последовательностей в растительный геном исходных трансгенных растений табака.

    3.4 Мозаичный характер проявления экспрессии гена nptll в трансгенных растениях табака модельной линии Nu 21.

Изучение стабильности экспрессии чужеродных генов у трансгенных растений табака (Nicotiana tabacum L.) (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

За последнее десятилетие в ведущих биотехнологических центрах мира интенсивно ведутся работы по модификации ядерного генома высших растений с применением методов генной инженерии. При создании трансгенных растений и их внедрении в сельское хозяйство как коммерческих культур наиболее важным моментом является достижение высокого и стабильного уровня экспрессии перенесенных целевых генов как среди исходных трансформантов и их потомков от самоопыления, так и у гибридов от их скрещивания. Исследования стабильности экспрессии и наследования чужеродной ДНК в геноме трансгенных растений показали, что, как правило, они наследуются по классическим законам Менделя как доминантные мутации (Potrykus et al., 1985; Budar et al, 1986). Однако уже через несколько лет после получения первых трансформантов исследователи столкнулись с явлением вариабельности экспрессии чужеродных генов и феноменом неменделевского наследования, связанного с потерей экспрессии («замолканием») трансгенов (Potrykus et al., 1985; Budar et al, 1986; Deroles, Gardner, 1988). С начала 1990;х годов и до настоящего времени продолжается активное исследование феномена инактивации и изменений в экспрессии перенесенных генов у генетически модифицированных растений (Matzke et al., 1989, 2000, 2004; Mittelsten Scheid et al, 1991; Vance, Vaucheret, 2001).

Частота инактивации гетерологичных генов в первом поколении от самоопыления исходных трансформантов, полученных с помощью агробактериальной трансформации, может составлять немногим более половины случаев по данным разных исследований (г dar et al., 1986; Deroles, Gardner, 1988; Meza et al, 2001; Sallaud et al, 2001V В данную группу в основном входят трансформанты с множественны. инсерциями чужеродной ДНК, интегрированными в один или несколько районов растительного генома. Однако известны случаи потери экспрессии триис с >в в последующих поколениях при самоопылении моноинсерционных растений (Cherdshewasart et al., 1993; Metz et al, 1997; Дейнеко и др., 1998; McCabe et al, 1999; Fu et al, 2000; Vain et al, 2002; Sallaud et al, 2003) и у гибридов от их скрещиваний (Cherdshewasart et al., 1993; Schmulling, Rohrig, 1995; Charrier et al, 2000). Частота инактивации может существенно возрастать, если в состав генетической конструкции включены тандемные копии генов, как в прямой, так и в обратной ориентации (Wang, Waterhouse, 2000; Ma, Mitra, 2002).

Непредсказуемые изменения в стабильности экспрессии трансгенов как среди потомков от самоопыления, так и у гибридов от скрещиваний трансгенных растений, нежелательны с коммерческой точки зрения и такие трансформанты необходимо выбраковывать в дальнейшей селекционной работе. Однако трансгенные растения с нестабильным уровнем экспрессии чужеродных генов представляют несомненный интерес в качестве моделей для исследования причин и механизмов инактивации экспрессии рекомбинантных генов, что вносит существенный вклад в понимание молекулярно-генетических механизмов регуляции экспрессии растительных генов (Fagard, Vaucheret, 2000; Matzke et al, 2000) и способов защиты растительного генома от амплификации транспозонных элементов, вирусов и вироидов (Vance, Vaucheret, 2001).

Актуальность проблемы.

Бурное развитие генетической инженерии и биотехнологии, разработка методов переноса генетического материала в растительную клетку позволило модифицировать геном многих видов растений. Трансгенные растения представляют собой яркий пример преодоления физических, эволюционных и генетических барьеров, которые изолируют геномы различных организмов (Miki, McHugh, 2004). К настоящему времени накоплены экспериментальные данные о нестабильности экспрессии чужеродной генетической информации в растительном геноме, связанные, главным образом, с инактивацией и изменениями в экспрессии гетерологичных генов (Flavel, 1994; Matzke, Matzke, 1995; Matzke el al, 2000). На трансгенных растениях табака, риса и Arabidopsis thaliana получены модельные линии, позволяющие изучать данный феномен (Kilby et al, 1992; Matzke et al, 1994aVoucheret et al., 1994; Davies et al, 1997; Mittelsten Sheid et al, 1998; Fu et al, 2000). Матзцке с соавт. на трансгенном табаке исследовали свойства и структуру трансгенного Н локуса, который включает серию аллелей. Аллели со сложной структурой Т-ДНК (с дупликациями, векторными последовательностями) способны вызывать процесс гранс-инактивации других чужеродных генов под управлением NOS промотора нопалинсинтазы A. tumeficeins в геноме гибридов (Matzke et al, 1989, 1994аJakowitsch et al., 1999). Достаточно хорошо исследован мультикопийный локус 271, способный вызывать замолкание экспрессии трансгенов, находящихся под управлением 35S промотора ВМЦК у трансгенных растений табака (Vaucheret et al., 1994; Park et al, 1996). Именно на трансгенных растениях петунии и томата в 1990 году впервые был описан феномен ко-супрессии — координированного подавления экспрессии трансгенов и гомологичных им хозяйских генов, связанного с посттранскрипционным разрушением мРНК в цитоплазме (Napoli et al., 1990; Van der Krol et al, 1990; Smith et al., 1990). Данное явление в настоящее время обнаружено у нематоды Caenorhabditis elegans (Fire et al., 1998), Drosophila melanogaster (Misquitta et al., 1999; Pal-Bhadra et al, 2002), Trypanosome brucei (Ngo et al., 1998), Paramecium (Ruiz et al, 1998), млекопитающих (Wianny et al., 2000) и получило название РНК интерференция.

На основе феномена инактивации экспрессии трансгенов разработаны рекомендации для создания различных генетических конструкций, как обеспечивающих достаточно высокий уровень экспрессии гетерологичного белка в трансформантах, так и целенаправленно вызывающих инактивацию экспрессии определенных растительных генов (Wesley et al., 2001; Gossele et al, 2002; Stoutjesdijk et al, 2002; Brummel et al, 2003).

Сходный феномен инактивации множественных копий генов в ядерном геноме в настоящее время активно исследуется у низших грибов Neurospora crassa (Selker, 1997), Ascobolus immerses (Rhounim et al., 1992), Coprinus cinereus (Freedman, Pukkila, 1993), Magnoporte grisea (Ikeda et al., 2002) и Podospora anserine (Graia et al, 2001). Показано, что интеграция множественных тандемных копий гена white в геном Drosophila melanogaster приводила к нарушению стабильности экспрессии трансгена, что проявлялось либо как мозаицизм, либо как отсутствие ожидаемого фенотипа (Dorer, Henikoff, 1997). Авторами была установлена отрицательная корреляция между числом встроенных копий трансгена и стабильностью его экспрессии. Взаимосвязь между числом копий гена и уровнем его экспрессии обнаружена и для ряда собственных растительных генов (Todd, Vodkin, 1996; Luffed al, 1999). Так ген pail-pai4 A. thaliana линии Wassilewskija, организованный в виде инвертированного повтора, подавляет экспрессию трех гомологичных однокопийных генов pail, pai2, pai3 линии Colombia при объединении их в геноме гибридов (Luff et al, 1999).

Таким образом, в связи с интенсивным развитием генетической инженерии и биотехнологии растений проблема инактивации экспрессии чужеродных генов в трансгенных растениях представляется весьма актуальной. Важность данных исследований очевидна, так как усилия многих исследователей по реконструкции генома растений могут не привести к желаемым результатам. Исследования феномена инактивации экспрессии чужеродных генов в геноме трансгенных растений вносят существенный вклад и в решение фундаментальных задач — выявлены новые механизмы регуляции экспрессии растительных генов и устойчивости к вирусам, ТЭ, основанные на гомологии нуклеотидной последовательности (Fagard, Vaucheret, 2001; Vance, Vaucheret, 2001; Matzke, Matzke, 2004). Однако, несмотря на очевидный прогресс данного научного направления, остается еще много неясных вопросов. Поэтому изучение стабильности экспрессии чужеродных генов у трансформантов и их потомков, у гибридов от различных видов скрещиваний, получение новых модельных систем на трансгенных растениях представляется чрезвычайно актуальным.

Цель и задачи исследования

.

Целью настоящего исследования являлось изучение стабильности экспрессии чужеродных генов у трансгенных растений табака (Nicotiana tabacum L.) в поколениях от самоопыления и гибридах от различных типов скрещиваний. Для достижения поставленной цели было необходимо решить следующие задачи:

1. Провести гибридологический анализ стабильности экспрессии маркерного гена nptll у трансгенных растений табака с одной инсерцией Т-ДНК в ядерном геноме.

2. Проанализировать стабильность наследования гена nptll у трансгенных растений табака с множественными событиями интеграции Т-ДНК.

3. Выделить модельные линии трансгенных растений табака, содержащих в составе области Т-ДНК прямые или инвертированные повторы гена uidA, с нестабильным характером экспрессии маркерных генов.

4. Провести гибридологический анализ наследования мозаичного характера проявления экспрессии гена nptll в трансгенных растениях табака модельной линии Nu 21.

Научная новизна и практическая ценность.

Для изучения наследования и стабильности экспрессии чужеродных генов были выделены модельные линии трансгенных растений табака: 1) трансгенные растения с одиночными и множественными вставками Т-ДНК- 2) трансформанты, имеющие в геноме Т-ДНК инсерцию с дупликацией гена uidA и одной копией гена nptll- 3) трансгенное растение табака Nu 21 с мозаичным характером проявления экспрессии маркерного гена nptll. В исследовании представлены различные варианты организации инсерций Т-ДНК, при этом, использование маркерных генов позволило на больших выборках проследить особенности их наследования в поколениях и гибридах трансгенных растений. Проведен гибридологический анализ характера наследования маркерного гена nptll в поколениях от самоопыления исходных трансформантов, а так же гибридов от различных видов скрещиваний. Установлено, что частота инактивации гомологичных трансгенов существенно возрастает в геноме гибридных растений. Впервые показано, что наличие дупликации гена uidA в составе Т-ДНК инсерции оказывает существенное влияние на стабильность экспрессии рядом расположенного другого маркерного гена nptll, при этом инактивированное состояние по гену uidA влияло на стабильность экспрессии гена nptll преимущественно в гемизиготе. Впервые проведен гибридологический анализ наследования мозаичного характера экспрессии маркерного гена nptll у потомков (Tj-Т4) и гибридов от скрещиваний с диким типом трансгенных растений табака. Отобраны гибридные комбинации и потомки от самоопыления, представляющие несомненный интерес для дальнейшего более детального изучения молекулярно-генетических механизмов инактивации экспрессии трансгенов.

Апробация работы. Материалы диссертационной работы были представлены на следующих конференциях, симпозиумах и конгрессах: международной конференции, посвященной памяти академика А. А. Баева. Москва, 20−22 мая 1996 г.- German-Russian Cooperation in Biotechnology. Workshop IV. Russia. St.-Peterburg, October 10−13, 1996 г.- международной конференции «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда». Москва, 1997 г.- международной конференции «Новые направления биотехнологии». Москва, 27−29 апреля 1998 г.- International Congress «Plant Biotechnology and in vitro biology in the 21st century». Jerusalem, Israel, June 14−19, 1998 г.- всероссийском симпозиуме «Изучение генома и генетическая трансформация растений». Иркутск, 23−27 августа 1999 г.- II съезде Всесоюзного Общества Генетиков и Селекционеров (ВОГИС). Санкт-Петербург, 1−5 февраля 2000 г.- конференции молодых ученых, посвященной 100-летию со дня рождения М. А. Лаврентьева. Новосибирск, 4−6 декабря 2000 г.- международном симпозиуме «Молекулярные механизмы генетических процессов и биотехнология», Москва (18−21 ноября) — Минск (22−24 ноября), 2001 г.- 1-м международном конгрессе «Биотехнология — состояние и перспективы развития». Москва, 14−18 октября 2002 г.- 8-й международной конференции «Биология клеток растений in vitro и биотехнология». Саратов, 9−13 сентября 2003 г.) — III съезде ВОГиС «Генетика в XXI веке: современное состояние и перспективы развития». Москва, 6−12 июня 2004 г.- международной научной конференции «Молекулярная генетика, геномика и биотехнология». Минск, 24−26 ноября 2004 г. Материалы диссертационной работы представлялись в устных докладах на отчетных сессиях ИЦиГ СО РАН в 2001, 2004 гг.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 7 статей.

Deineko Е., Zagorskaya A., Filipenko Е., Filipenko М., Novoselya Т., Kochetov А., Komarova М., Shumnyi V. Instability of nptll gene expression in the progeny of transgenic tobacco plants (Nicotiana tabacum L. and N. plumbaginifolia L.) // Biotechnology and biotechnological equipment. 1996. N. 4. P. 89−92.

Дейнеко E.B., Новоселя T.B., Загорская A.A., Филипенко Е. А., Шумный В. К. Стабильность экспрессии гена nptll в популяции трансгенных растений табака // ДАН. 1999. Т. 369. С. 420−423.

Новоселя Т.В., Дейнеко Е. В., Шумный В. К. Стабильность экспрессии гена nptll у трансгенных растений табака (.Nicotiana tabacum L.) с множественными инсерциями Т-ДНК // Генетика. 2000. Т. 36. 27−430.

Дейнеко Е.В., Новоселя Т. В., Загорская .л. Филипенко Е. А., Шумный В. К. Нестабильность экспрессии чужеродных ген, трансгенных растений табака // Физиология растений. 2000. Т. 47. №. 3. С. 394.

Дейнеко Е.В., Новоселя Т. В., Загорская,. Филипенко Е. А., Пухначева Н. В., Шумный В. К. Инактивирование чужеродных генов в геноме трансгенных растений // Изучение генома и генетическая трансформация растений. Новосибирск: Наука, 2001. С. 132−142.

Novoselia T.V., Deineko E.V., Filipenko E.A., Shumnyi V.K. Expression stability of marker gene nptll in transgenic plants Nicotiana tobacum L. with single T-DNA insertion 11 Biotechnology and biotechnological equipment. 2001. V.15. N.2. P. 3−7.

Новосел я T.B., Дейнеко E.B. Моделирование нестабильной экспрессии гена nptll у трансгенных растений табака // Физиология растений. 2002. Т. 49. № 3. С. 437 443.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, трех глав, заключения, выводов, списка цитируемой литературы (276 наименований). Работа изложена на 172 страницах, включает 29 рисунков и 26 таблиц в тексте диссертационной работы.

ВЫВОДЫ.

1. Чужеродные гены в новом генетическом окружении стабильно наследовались в поколениях Tj и Т2, получаемых при самоопылении исходных трансформантов как с одной, так и множественными инсерциями Т-ДНК. Нестабильность экспрессии маркерного гена выявлялась у гибридов от скрещиваний трансформантов между собой. Показано, что у трансформантов со множественными инсерциями отклонения от ожидаемых расщеплений выявлялись уже среди гибридов Fb тогда как у моноинсерционных трансгенных растений нестабильность в проявлении гена nptll обнаруживалась только среди потомков F2. Трансформанты с одной инсерцией трансгена предпочтительны для дальнейшей селекционной доработки исходного материала.

2. Установлено, что присутствие дупликации (гена uidA) в составе Т-ДНК инсерции значительно снижало стабильность экспрессии рядом расположенного маркерного гена {nptll). Наличие дупликации в инвертированном виде вызывало резкое снижение стабильности экспрессии гена nptll (до 20%) в потомстве первого поколения от самоопыления исходных трансформантов, в то время как в случае прямой дупликации нарушения стабильности экспрессии маркерного гена отмечались у потомков лишь во втором поколении от самоопыления трансгенных растений.

3. Наличие прямой дупликации гена uidA в области Т-ДНК существенно снижало стабильность экспрессии близлежащего гена nptll у гибридов от различных типов скрещиваний исходных трансформантов (с нетрансгенными растениями табака, между исходными трансформантами).

4. На основании гибридологического анализа впервые установлено, что нарушение экспрессии гена nptll происходило у гибридов, гемизиготных по инактивированной прямой дупликации гена uidA.

5. Установлено, что нестабильный уровень экспрессии перенесенных генов может проявляться в виде мозаичной экспрессии на уровне соматических тканей. Выделена модельная линия Nu 21 с мозаичным характером проявления экспрессии маркерного гена nptll. Показано наследование данного фенотипа (в Т!-Т4 и у гибридов F] от анализирующего скрещивания). Существование двух метастабильных состояния трансгена на уровне соматических тканей: активного и неактивного, вероятно, было связано с модификацией ДНК — метилированием цитозина в последовательности гена nptll.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Д., Скотт Р., Армитидж Ф. и др. Генная инженерия растений: лабораторное руководство. М.: Мир, 1991. 408 с.
  2. Е.В., Загорская А. А., Филипенко Е. А. и др. Нестабильность экспрессии гена nptll у трансгенных растений табака (Nicotiana tabacum L.) при инбридинге //Генетика. 1998. Т. 34. № 9. С. 1212−1219.
  3. Е.В., Новоселя Т. В., Загорская А. А. и др. Стабильность экспрессии гена nptll в популяции трансгенных растений табака // ДАН. 1999. Т. 369. С. 420−423.
  4. Т.А., Лебедева О. В., Огаркова О. А. и др. Arabidopsis thaliana модельный объект генетики растений. М: Макс пресс, 2003. 219 с.
  5. Д., Паренти Ф. Антибиотики. М: Мир, 1985. С. 70−71.
  6. Т.В., Дейнеко Е. В. Моделирование нестабильной экспрессии гена nptll у трансгенных растений табака // Физиология растений. 2002. Т. 49. № 3. С. 437 443.
  7. Т.В., Дейнеко Е. В., Шумный В. К. Стабильность экспрессии гена nptll у трансгенных растений табака {Nicotiana tabacum L.) с множественными инсерциями Т-ДНК // Генетика. 2000. Т. 36. № 3. С. 427−430.
  8. В.Ю. Биометрические методы. М: Наука, 1964. 415 с.
  9. М.И. Механизм агробактериальной трансформации растений. Саратов: Издательство «Слово», 2001. 256 с.
  10. Albert Н., Dale Е.С., Lee Е., Ow D.W. Site-specific integration of DNA into wild-type and mutant lox sites placed in the plant genome // Plant J. 1995. V.7. P. 649−659.
  11. Allen G.C., Hall G. Jr., Michalowski S. et al. High-level transgene expression in plant cells: effects of a strong scaffold attachment region from tobacco // Plant Cell. 1996. V.8.P. 899−913.
  12. Allen G.C., Spiker S., Thompson W.F. Use of matrix attachment regions (MARs) to minimize transgene silencing // Plant Mol. Biol. 2000. V. 43. P. 361−376.
  13. Alonso J.M., Stepanova A.N., Leisse T.J. et al. Genome-wide insertional mutagenesis of Arabidopsis thaliana // Science. 2003. V. 301. P. 653−657.
  14. Amedeo P., Habu Y., Afsar K. et al. Disruption of the plant gene MOM releases transcriptional silencing of methylated genes //Nature. 2000. V. 405. P. 203−206.
  15. Ascenzi R., Ulker В., Todd J.J. et al. Analysis of trans-silencing interactions using transcriptional silencers of varying strength and targets with and without flanking nuclear matrix attachment regions // Transgenic Res. 2003. V. 12. P. 305−318.
  16. Assaad F.F., Singer E.R. Somatic and germinal recombination of a direct repeat in Arabidopsis II Genetics. 1992. V. 132. P. 553−566.
  17. Assaad F.F., Tucker K.L., Singer E.R. Epigenetic repeat-induced silencing (RIGS) in Arabidopsis II Plant Mol. Biol. 1993. V. 22. P. 1067−1085.
  18. Beaujean A., Sangwan R.S., Hodges M., Sangwan-Norreel B.S. Effect of ploidy and homozygosity on transgene expression in primary tobacco transformants and their androgenetic progenies // Mol. Gen. Genet. 1998. V. 260. P. 362−371.
  19. Balandin Т., Castresana C. Silencing of a beta-l, 3-glucanase transgene is overcome during seed formation // Plant Mol. Biol. 1997. V. 34. P. 125−137.
  20. Bateman A. The SGS3 protein involved in PTGS finds a family // BMC
  21. Bioinformatics. 2002. V. 3. P. 21−24.
  22. Baulcombe D.C. Fast forward genetics based on virus-induced gene silencing // Curr. Opin. Plant Biol. 1999. V. 2. P. 109−113.
  23. Boerjan W., Bauw G., Van Montagu M., Inze D. Distinct phenotypes generated by overexpression and suppression of S-adenosyl-L-methionine synthetase reveal developmental patterns of gene silencing in tobacco // Plant Cell. 1994. V. 6. P. 14 011 414.
  24. Bohmert K., Camus I., Bellini C. et al. AGOl defines a novel locus of Arabidopsis controlling leaf development // The EMBO J. 1998. V. 17. P. 170−180.
  25. Bollmann J., Carpenter R., Coen E.S. Allelic interactions at the nivea locus of Antirrhinum II Plant Cell. 1991. V. 3. P. 1327−1336.
  26. Bhat S.R., Srinivasan S. Molecular and genetic analyses of transgenic plants: consideration and approaches // Plant Science. 2002. V. 163. P. 673−681.
  27. Brink R.A. Paramutation // Annual Review of Genetics. 1973. Y. 7. P. 129−152.
  28. Brzeski J., Jerzmanowski A. Deficient in DNA methylation 1 (DDM1) defines a novel family of chromatin-remodeling factors // The J. of Biological Chemistry. 2003. V. 278. P. 823−828.
  29. Braun R. The future of GM crops // Science. 2003. V. 300. P. 61−62.
  30. Brummell D.A., Balint-Kurti P.J., Harpster M.H. et al. Inverted repeat of a heterologous 3'-untranslated region for high-efficiency, high-throughput gene silencing // Plant J. 2003. V. 33. P. 793−800.
  31. Budar F., Thia-toong L., Van Montagu M., Hernalsteens J.-P. Agrobacterium mediated gene transfer results mainly in transgenic plants transmitting T-DNA as a single Mendilian factor // Genetics. 1986. V. 114. P. 303−313.
  32. Bucherna N., Okkels F.T., Palmgren C. Developmental timing of transgene expression is dosage dependent // Physiologia Plantarum. 1999. V. 107. P. 90−97.
  33. Butaye K.M., Goderis I.J., Wouters P.F. et al. Stable high-level transgene expression in Arabidopsis thaliana using gene silencing mutants and matrix attachment regions // Plant J. 2004. V. 39. P. 440−449.
  34. Cao X., Jacobsen S.E. Locus-specific control of asymmetric and CpNpG methylation by the DRM and CMT3 methyltransferase genes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002. V. 99. P. 16 491−16 498.
  35. Charrier В., Scollan C., Ross S. et al. Co-silencing of homologous transgenes in tobacco // Mol. Breeding. 2000. V. 6. P. 407−419.
  36. Cherdshewasart W., Gharti-Chhetri G.B., Saul M.W. et al. Expression instability and genetic disorders in transgenic Nicotiana plumbaginifolia L. plants // Transgenic Research. 1993. V. 2. P. 307−320.
  37. Chen S., Jin W., Wang M. et al. Distribution and characterization of over 1000 T-DNA tags in rice genome // Plant J. 2003. Y. 36. P. 105−113.
  38. Chilton M.D., Que Q. Targeted integration of T-DNA into the tobacco genome at double-stranded breaks: new insights on the mechanism of T-DNA integration // Plant Physiol. 2003. V. 133. P. 956−965.
  39. Christou P. Genetic-transformation of crop plants using microprojectile bombardment //Plant J. 1992. V. 2. P. 275−281.
  40. Citovsky V., Wong M.L., Zarnbryski P. Cooperative interaction of Agrobacterium VirE2 protein with single-stranded DNA: implications for the T-DNA transfer process // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. V. 86. P. 1193−1197.
  41. Citovsky V., Zupan J., Warnick D., Zarnbryski P. Nuclear localization of Agrobacterium VirE2 protein in plant cells // Science. 1992. V. 256. P. 1802−1805.
  42. Conceizro A.S., Van Vliet A., Krebbers E. Unexpectedly higher expression levels of a chimeric 2S albumin seed protein transgene from a tandem array construct // Plant Mol. Biol. 1994. V. 26. P. 1001−1005.
  43. Coen E.S., Carpenter R. A semi-dominant allele, niv-525, acts in trans to inhibit expression of its wild-type homologue in Antirrhinum majus II The EMBO J. 1988. V. 7. P. 877−883.
  44. Crossway A., Oakes J.V., Irine J.M. et al. Integration of foreign DNA following microinjection of tobacco mesophyll protoplasts // Mol. Gen. Genet. 1986. V. 202. P. 179−185.
  45. Dalmay Т., Hamilton A., Rudd S. et al. An RNA-dependent RNA polymerase gene in Arabidopsis is required for posttranscriptional gene silencing mediated by a transgene but not by a virus // Cell. 2000. V. 101. P. 543−553.
  46. Dalmay Т., Horsefield R., Braunstein Т.Н., Baulcombe D.C. SDE3 encodes an RNA helicase required for post-transcriptional gene silencing in Arabidopsis II The EMBO J. 2001. V. 20. P. 2069−2078.
  47. Day C.D., Lee E., Kobayashi J. et al. Transgene integration into the same chromosome location can produce alleles that express at a predictable level, or alleles that are differentially silenced // Genes Dev. 2000. V. 14. P. 2869−2880.
  48. De Buck S., Jacobs A., Van Montagu M., Depicker A. The DNA sequences of T-DNA junctions suggest that complex T-DNA loci are formed by a recombination process resembling T-DNA integration // Plant J. 1999. V. 20. P. 295−304.
  49. De Borne F., Vincentz M., Chupeau Y., Vaucheret H. Co-supression of nitrate reductase host genes and transgenes in transgenic tobacco plants // Mol. Gen. Genet. 1994. V. 243. P. 613−621.
  50. DeBlock M., Herrera-Estrella L., Van Montagu M. et al. Expression of foreign genes in regenerated plants and their progeny // The EMBO J. 1984. V. 3. P. 1681−1689.
  51. De Carvalho F., Gheysen G., Kushnir S. et al. Suppression of beta-l, 3-glucanase transgene expression in homozygous plants // The EMBO J. 1992. V. 11. P. 25 952 602.
  52. Deineko E., Zagorskaya A., Filipenko E. et al. Instability of nptll gene expression in the progeny of transgenic tobacco plants (Nicotiana tabacum L. and N. plumbaginifolia L.) // Biotechnology and biotechnological equipment. 1996. N. 4. P. 89−92.
  53. Davies G.J., Sheikh M.A., Ratcliffe O.J. et al. Genetics of homology-dependent gene silencing in Arabidopsis: a role for methylation // The Plant J. 1997. V.12. P. 791−804.
  54. Deblaere R., Reynaerts J., Hofte H. et al. Vectors for cloning in plant cells // Meth. Enzymol. 1987. V. 153. P. 277−291.
  55. Deroles S.C., Gardner R.C. Expression and inheritance of kanamicin resistance in large number of transgenic petunias generated by Agrobacterium-mediated transformation // Plant Mol. Biol. 1988. V. 11. P. 355−364.
  56. De Carvalho F., Frendo P., Inze D. et al. Co-suppression of beta-l, 3-glucanase genes in Nicotiana tabacum II Cur. Top Microbiol. Immunol. 1995. V. 197. P. 91−103.
  57. Dehio C., Schell J. Stable expression of a single-copy rolA gene in transgenic Arabidopsis thaliana plants allows an exhaustive mutagenic analysis of the transgene-associated phenotype // Mol. Gen. Genet. 1993. V. 241. P. 359−366.
  58. Dehio C., Schell J. Identification of plant genetic loci involved in a posttranscriptional mechanism for meiotically reversible gene silencing // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V.91.P. 5538−5542.
  59. De Neve M., De Buck S., Jacobs A. et al. T-DNA integration patterns in co-transformed plant cells suggest that T-DNA repeats originate from co-integration of separate T-DNAs // Plant J. 1997. V. 11. P. 15−29.
  60. Deshayes A., Herrera-Estrella L., Caboche M. Liposome-mediated transformation of tobacco mesophyll protoplasts by an Escherichia coli plasmid // The EMBO J. 1985. V.4.P. 2731−2737.
  61. Dorer D.R., Henikoff S. Transgene repeat arrays interact with distant heterochromatin and cause silencing in с is and trans И Genetics. 1997. V. 147. P. 1181−1190.
  62. De Wilde С., Van Houdt H., De Buck S. et al. Plants as bioreactors for protein production: avoiding the problem of transgene silencing // Plant Mol. Biol. 2000. V. 43. P. 347−359.
  63. Dobie K., Mehtali M., McClenaghan M., Lathe R. Variegated gene expression in mice // Trends in Genetics. 1997. V.13. P. 127−130.
  64. Dumas F., Duckely M., Pelczar P. et al. An Agrobacterium VirE2 channel for transferred-DNA transport into plant cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. V. 98. P. 485−490.
  65. Ebinuma P., Sugita K., Matsunaga E. et al. Systems for the removal of a selection marker and their combination with a positive marker // Plant Cell Rep. 2001. V. 20. P. 383−392.
  66. Elmayan Т., Balzergue S., Beon F. et al. Arabidopsis mutants impaired in cosupression // The Plant Cell. 1998. V. 10. P. 1747−1757.
  67. M., Vaucheret H. (Traris)gene silencing in plants: how many mechanisms? // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 2000. V. 51. P. 167−194.
  68. Faugeron G., Rhounim L., Rossignol J.L. How does the cell count the number of ectopic copies of a gene in the premeiotic inactivation process acting in Ascobolus immerses? // Genetics. 1990. V. 124. P. 585−591.
  69. Fire A., Xu S., Montgomery M.K. et al. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans //Nature. 1998. V. 391. P. 806−811.
  70. Finnegan E.J., Kovac K.A. Plant DNA methyltransferases // Plant Mol. Biol. 2000. V. 43. P. 189−201.
  71. Finnegan E.J., Peacock W.J., Dennis E.S. Reduced DNA methylation in Arabidopsis thaliana results in abnormal plant development // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V. 93. P. 8449−8454.
  72. Flavell R.B. Inactivation of gene expression in plants as a consequence of specific sequence duplication // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V. 91. P. 3490−3496.
  73. Forsbach A., Schubert D., Lechtenberg B. et al. Comprehensive characterization of single-copy T-DNA insertions in the Arabidopsis thaliana genome // Plant Mol. Biol. 2003. V. 52. P. 161−176.
  74. Fraley R.T., Rogers S.G., Horsch R.B. et al. Expression of bacterial genes in plant cells //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1983. V. 80. P. 4803−4807.
  75. Freedman Т., Pukkila P.J. De novo methylation of repeated sequences in Coprinus cinereus // Genetics. 1993. V. 135. P. 357−366.
  76. Fromm M., Taylor L.P., Walbot V. Expression of genes transferred into monocot and dicot plant cells by electroporation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1985. V. 82. P. 5824−5828.
  77. Furner I.J., Sheikh M.A., Collett C.E. Gene silencing and homology-dependent gene silencing in Arabidopsis: genetic modifiers and DNA methylation // Genetics. 1998. V. 149. P.651−662.
  78. Fu X., Kohli A., Twyman R.M., Christon P. Alternative silencing effects involve distinct types of non-spreading cytosine methylation at a three-gene, single-copy transgenic locus in rice // Mol. Gen. Genet. 2000. V. 263. P. 106−118.
  79. Gelvin S.B. The introduction and expression of transgenes in plants // Curr. Opin. in Biotechnology. 1998. V. 9. P. 227−232.
  80. Gelvin S.B. Agrobacterium-mediated plant transformation: the biology behind the «Gene-Jockeying» tool // Microbiol, and Mol. Biol. Rev. 2003. V. 67. P. 16−37.
  81. Gendrel A.V., Lippman Z., Yordan C. et al. Dependence of heterochromatic histone H3 methylation patterns on the Arabidopsis gene DDM1 II Science. 2002. V. 297. P. 1871−1873.
  82. Gheysen G., Villarroel R., Van Montagu M. Illegitimate recombination in plants: a model for T-DNA integration // Genes Dev. 1991. V. 5. P. 287−297.
  83. Glazov E., Phillips K., Budziszewski G.J. et al. A gene encoding an RNase D exonuclease-like protein is required for post-transcriptional silencing in Arabidopsis 11 Plant J. 2003. V. 35. P. 342−349.
  84. Gong Z., Morales-Ruiz Т., Ariza R.R. et al. ROS1, a repressor of transcriptional gene silencing in Arabodopsis, encodes a DNA glycosylase/lyase // Cell. 2002. V. 111. P. 803−814.
  85. Gossele V., Fache I., Meulewaeter F. et al SVISS a novel transient gene silencing system for gene function discovery and validation in tobacco plants // Plant J. 2002. V. 32. P. 859−866.
  86. Graia F., Lespinet O., Rimbault B. et al Genome quality control: RIP (repeat-induced point mutation) comes to Podospora II Molecular Microbiology. 2001. V. 40. P. 586 595.
  87. Gruenbaum Y., Naveh-Many Т., Cedar H., Razin A. Sequence specificity of methylation in higher plant DNA // Nature. 1981. V. 292. P. 860−862.
  88. Halfhill M.D., Millwood R.J., Rufty T.W. et al Spatial and temporal patterns of green fluorescent protein (GFP) fluorescence during leaf development in transgenic oilseed rape, Brassica napus L. // Plant Cell Rep. 2003. V. 22. P. 338−343.
  89. Halpin C., Barakate A., Askari B.M. et al Enabling technologies for manipulating multiple genes on complex pathways // Plant Mol. Biol. 2001. V. 47. P. 295−310.
  90. Hart C.M., Fischer N., Neuhaus J-M., Meins F. Regulated inactivation of homologous gene expression in transgenic Nicotiana sylvestris plants containing a defense-related tobacco chitinase gene // Mol. Gen. Genet. 1992. V. 235. P. 179−188.
  91. Herberl-Bors E., Charvat В., Thompson D. et al. Genetic analysis of T-DNA insertions into the tobacco genome // Plant Cell Reports. 1988. V. 7. P. 571−574.
  92. Herrera-Estrella L., Teeri Т.Н., Simpson J. Use of reporter genes to study gene expression in plant cells // Plant Mol. Biol. Manual Bl. Ed.: Gelvin S.B., Schilperoort R.A. Kluwer Academic Publishers. 1988. P. 1−22.
  93. Hirochika H., Okamoto H., Kakutani T. Silencing of retrotransposons in Arabidopsis and reactivation by the ddml mutation // The Plant Cell. 2000. V. 12. P. 357−368.
  94. Hobbs S.L.A., Kpodar P., DeLong С. M. O. The effect of T-DNA copy number, position and methylation on reporter gene expression in tobacco transformants // Plant Mol. Biol. 1990. V. 15. P. 851−864.
  95. Holliday R. The inheritance of epigenetic defects // Science. 1987. V. 238. P.163−170.
  96. Horsch R.B., Fraley R.T., Rogers S.G. et al. Inheritance of functional foreign genes in plants // Science. 1984. V. 223. P. 496−498.
  97. Howard E.A., Zupan J.R., Citovsky V., Zambiyski P.C. The VirD2 protein of A. tumefaciens contains a C-termirial bipartite nuclear localization signal: implications for nuclear uptake of DNA in plant cells // Cell. 1992. V. 68. P. 109−118.
  98. Iglesias V.A., Moscone E.A., Papp I. et al. Molecular and cytogenetic analyses of stably and unstably expressed transgene loci in tobacco // The Plant Cell. 1997. V. 9. P. 1251−1264.
  99. Ikeda K., Nakayashiki H., Kataoka T. et al. Repeat-induced point mutation (RIP) in Magnoporte grisea: implications for its sexual cycle in the natural field context // Molecular Microbiology. 2002. V. 45. P. 1355−1364.
  100. Ingelbrecht I., Van Houdt H., Van Montagu M., Depicker A. Posttranscriptional silencing of reporter transgenes in tobacco correlates with DNA methylation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V. 91. P. 10 502−10 506.
  101. Jacobsen S.E., Sakai H, Finnegan E.J. et al. Ectopic hypermethylation of flower-specific genes in Arabidopsis II Curr. Biol. 2000. V.10. P. 179−186.
  102. Jakowitsch J., Papp I., Moscone E.A. et al. Molecular and cytogenetic characterization of a transgene locus that induces silencing and methylation of homologous promoters in trans // The Plant J. 1999. V.17. P. 131−140.
  103. Jedelloh J.A., Bender J., Richards E.J. The DNA methylation locus Ddml is required for maintenance of gene silencing in Arabidopsis II Genes and Development. 1998. V. 12. P. 1714−1725.
  104. Jedelloh J.A., Stokes T.L., Richards E.J. Maintenance of genomic methylation requires a SWI2/SNf2-like protein // Nat. Genet. 1999. V. 22. P. 94−96.
  105. Jones J.D.G., Gilbert D.E., Grady K.L., Jorgensen R.A. T-DNA structure and gene expression in petunia plants transformed by Agrobacterium tumefaciens C58 derivatives // Mol. Gen. Genet. 1987. V. 207. P. 478−485.
  106. Jones P.A. Altering gene expression with 5-azacytidine // Cell. 1985. V. 40. P. 485 486.
  107. Jones C.G., Scothern G.P., Lycett G.W., Tucker G.A. The effect of chimeric transgene architecture on co-ordinate gene silencing // Planta. 1998. V. 204. P. 499−505.
  108. Jorgensen R., Snyder C., Jones J.D.G. T-DNA is organized predominantly in inverted repeat structures in plants transformed with Agrobacterium tumefaciens C58 derivatives // Mol. Gen. Genet. 1987. V. 207. P. 471−477.
  109. Jorgensen R.A. Cosupression, flower color patterns, and metastable gene expression states // Science. 1995. V. 268. P. 686−691.
  110. Jorgensen R.A., Cluster P.D., English J. et al Chalcone synthase cosuppression phenotypes in petunia flowers: comparison of sense vs. antisense constructs and single-copy vs. complex T-DNA sequences // Plant Mol. Biol. 1996. V. 31. P. 957 973.
  111. Joyce S.M., Cassels A., Jain M. Stress and aberrant phenotypes in vitro culture // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2003. V. 74. P. 103−121.
  112. Kaeppler S., Kaeppler H., Rhee Y. Epigentic aspects of somaclonal variation in plants // Plant Mol. Biol. 2000. V. 43. P. 17−188.
  113. Kakutani Т., Jeddeloh J.A., Flowers S.K. et al Developmental abnormalities and epimutations associated with DNA hypomethylations // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V. 93. P. 12 406−12 411.
  114. Kass S.U., Pruss D., Wolffe A.P. How does DNA methylation repress transcription? // Trends in Genetics. 1997. V. 13. P. 444−449.
  115. Kohli A., Gahakwa D., Vain P. et al Transgene expression in rice engineered through particle bombardment: molecular factors controlling stable expression and transgene silencing // Planta. 1999. V. 208. P. 88−97.
  116. Kilby N.J., Leyser H.M.O., Furner IJ. Promoter methylation and progressive transgene inactivation in Arabidopsis II Plant Mol. Biol. 1992. V. 20. P. 103−112.
  117. Kjemtrup S., Sampson K.S., Peele C.G. et al Gene silencing from plant DNA carried by a geminivirus // Plant J. 1998. V. 14. P. 91−100.
  118. Kloti A., He X., Potrykus I. et al Tissue-specific silencing of a transgene in rice // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002. V. 99. P. 10 881−10 886.
  119. Koncz C., Martini N., Mayerhofer R. et al High-frequency T-DNA-mediated gene tagging in plants // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. V. 86. P. 8467−8471.
  120. Kovarik A., Van Houdt H., Holy A., Depicker A. Drug-induced hypomethylation of a posttranscritionally silenced transgene locus of tobacco leads to partial release of silencing // FEBS letters. 2000. V. 467. P. 47−51.
  121. Kunz С., Schob H., Stam M. et al. Developmantally regulated silencing and reactivation of tobacco chitinase transgene expression // Plant J. 1996. V. 10. P. 437 450.
  122. Kumagai M.H., Donson J., Della-Cioppa G. et al. Cytoplasmic inhibition of carotenoid biosynthesis with virus-derived RNA // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P. 1679−1683.
  123. Kumar S, Fladung M. Transgene repeats in aspen: molecular characterization suggests simultaneous integration of independent T-DNAs into receptive hotspots in the host genome // Mol. Gen. Genet. 2000 a. V. 264. P. 20−28.
  124. Kumar S., Fladung M. Determination of transgenic repeat formation and promoter • methylation in transgenic plants // Biotechniques. 2000 б. V. 28. P. 1128−1137.
  125. Kumar S., Fladung M. Gene stability in transgenic aspen (Populus). II. Molecular characterization of variable expression of transgene in wild and hybrid aspen // Planta. 2001. V. 213. P. 731−740.
  126. Kumpatla S.P., Hall T.C. Longevity of 5-azacytidine-mediated gene expression and re-establishment of silencing in transgenic rice // Plant Mol. Biol. 1998. V. 38. P. 11 131 122.
  127. Kumpatla S. P, Chandrasekharan I.L., Iyer L.M. et al. Genome intruder scanning and Ф modulation systems and transgene silencing // Trends in Plant Science. 1998. V. 3. P.97.104.
  128. Langridge W.H., Fitzgerald К J., Koncz C. et al. Dual promoter of Agrobacterium tumefaciens mannopine synthase genes is regulated by plant growth hormones // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. V. 86. P.3219−3223.
  129. Lebel E.G., Masson J., Bogucki A., Paszkowski J. Stress-induced intrachromosomal recombination in plant somatic cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. V. 90. P. 422−426.
  130. Lechtenberg В., Schubert D., Forsbach A. et al. Neither inverted repeat T-DNA configurations nor arrangements of tandemly repeated transgenes are sufficient to trigger transgene silencing // Plant J. 2003 V. 34. P. 507−517.
  131. Linn F., Heidmann I., Saedler H., Meyer P. Epigenetic changes in the expression of the maize Al gene in Petunia hybrida: role of numbers of integrated copies and state of methylation //Mol. Gen. Genet. 1990. V. 222. P. 329−336.
  132. Luff В., Pawlowski L., Bender J. An inverted repeat triggers cytosine methylation of identical sequences in Arabidopsis II Molecular Cell. 1999. V. 3. P. 505−511.
  133. Lyznik L.A., Hirayama L., Rao K.V. et al. Heat-inducible expression of FLP gene in maize cells // Plant J. 1995. V.8. P. 177−186.
  134. Ma C., Mitra A. Intrinsic direct repeats generate consistent post-transcriptional gene silencing in tobacco // Plant J. 2002. V. 31. P.37−49.
  135. Matzke M., Primig M., Trnovsky J., Matzke A. Reversible methylation and inactivation of marker genes in sequentially transformed plants // The EMBO J. 1989. V. 8. P. 643−649.
  136. Matzke M. A., Matzke A.J.M. Gene interactions and epigenetic variation in transgenic plants // Developmental Genetics. 1990. V. 11. P. 214−223.
  137. Matzke M. A., Matzke A.J.M. Differential inactivation and methylation of a transgene in plants by two suppressor loci containing homologous sequences // Plant Mol. Biol. 1991. V. 16. P. 821−830.
  138. Matzke M.A., Neuhuber F., Matzke A.J.M. A variety of epistatic interactions can occur between partially homologous transgene loci brought together by sexual crossing II Mol. Gen. Genet. 1993. V. 236. P. 379−386.
  139. Matzke A.J.M., Neuhuber F., Park Y-D et al. Homology-dependent gene silencing in transgenic plants: epistatic silencing loci contain multiple copies of methylated transgenes// Mol. Gen. Genet. 1994 a. V. 244. P. 219−229.
  140. Matzke M. A., Matzke A.J.M., Mittelsten Scheid O. Inactivation of repeated genes -DNA-DNA interection? // 1994 b. Paszkowsky J., ed., Homologous Recombination and Gene Silencing in Plants. Kluwer, Dordrecht. The Netherlands. P. 271−307.
  141. Matzke M.A., Matzke A.J.M. How and Why Do Plants Inactivate Homologous (Trans) genes // Plant Physiol. 1995. V. 107. P. 679−685.
  142. Matzke M.A., Matzke M.J., Eggleston W.B. Paramutation and transgene silencing: a common response to invasive DNA? // Trends in plant science. 1996. V.l. P. 382−388.
  143. Matzke A. J., Matzke M.A. Position effects and epigenetic silencing of plant transgenes // Curr. Opin. Plant Biol. 1998. V.l. P. 142−148.
  144. Matzke M.A., Mette M.F., Matzke A.J.M. Transgene silencing by the host genome defense: implications for the evolution of epigenetic control mechanisms in plants and vertebrates // Plant Mol. Biol. 2000. V. 43. P. 401−415.
  145. Matzke M. A, Mette M.F., Jakowitsch J. et al. A test for transvection in plants: DNA pairing may lead to trans-activation or silencing of complex heteroalleles in tabacco // Genetics. 2001. V. 158. P. 451−461.
  146. Matzke M.A., Matzke A.J. Planting the seeds of a new paradigm // PLoS Biol. 2004. V. 2. P. 582−586.
  147. Mannerlof M., Terming P. Variability of gene expression in transgenic tobacco // Euphytica. 1997. V. 98. P. 133−139.
  148. Meng L., Bregitzer P., Zhang S., Lemaux P.G. Methylation of the exon/intron region in the Ubil promoter complex correlates with transgene silencing in barley // Plant Mol. Biol. 2003. V. 53. P. 327−340.
  149. Maqbool S.B., Christou P. Multiple traits of a agronomic importance in transgenic indica rice plants: analysis of transgene integration patterns, expression levels and stability // Molecular Breeding. 1999. V. 5. P. 471−480.
  150. Mayerhofer R., Koncz-Kalman Z., Nawrath C. et al. T-DNA integration: a mode of illegitimate recombination in plants // The EMBO J. 1991. V. 10. P. 697−704.
  151. Mazodier P., Cossart P., Giraud E., Gasser F. Completion of the nucleotide sequence of the central region of Tn5 confirms the presence of three resistance genes // Nucleic Acids Res. 1985. V. 13. P. 195−205.
  152. McCabe M., Mohapatra U.B., Debnath S.C. et al. Integration, expression and inheritance of two linked T-DNA marker genes in transgenic lettuce // Molecular Breeding. 1999. V. 5. P. 329−344.
  153. Meins F. Jr. RNA degradation and models for post-transcriptional gene-silencing // Plant Mol. Biol. 2000. V. 43. P. 261−273.
  154. Mette M.F., van der Winden J., Matzke M. A., Matzke A.J.M. Production of aberrant promoter transcripts contributes to methylation and silencing of unlinked promoters in trans // The EMBO J. 1999. V. 18. P. 89−100.
  155. Mette M.F., Aufsatz W., van der Winden J. et al. Transcriptional silencing and promoter methylation triggered by double-stranded RNA // The EMBO J. 2000. V. 19. P. 5194−5201.
  156. Metz P.L.J., Jacobsen E., Stiekema W.J. Occasional loss of expression of phosphinothricin tolerance in sexual offspring of transgenic oilseed rape (Brassica napus L.) // Euphitica. 1997. V. 98. P. 189−196.
  157. Meyer P., Linn F., Heidmann I. et al. Endogenous and environmental factors influence 35S promoter methylation of a maize Al gene construct in transgenic petunia and its colour phenotype // Mol. Gen. Genet. 1992. V. 231. P. 345−352.
  158. Meyer P., Heidmann I., Niedenhof I. Differences in DNA-methylation are associated with a paramutation phenomenon in transgenic petunia // The Plant Journal. 1993. V. 4. P. 89−100.
  159. Meyer P., Niedenhof I., ten Lohuis M. Evidence for cytosine methylation of nonsymmetrical sequences in transgenic Petunia hybrida II The EMBO J. 1994. V. 13. P. 2084−2088.
  160. Meyer P., Heidmann I. Epigenetic variants of a transgenic petunia line show # hypermethylation in transgene DNA: an indication for specific recognition of foreign
  161. DNA in transgenic plants // Mol. Gen. Genet. 1994. V. 243. P. 390−399.
  162. Meyer P. Understanding and controlling transgene expression // TIBTECH. 1995. V. 13. P. 332−337.
  163. Meyer P. Transcriptional transgene silencing and chromatin components // Plant Mol. Biol. 2000. V. 43. P. 221−234.
  164. Meza Т., Kamfjord D., Hakelien A-M. et al. The frequency of silencing in Arabidopsis thaliana varies highly between progeny of siblings and can be influenced by
  165. Ф environmental factors // Transgenic Research. 2001. V. 10. P. 3−67.
  166. Miki В., McHugh S. Selectable marker genes in transgenic plants: applications, alternatives and biosafety // J. of Biotechnology. 2004. V. 107. P. 193−232.
  167. Misquitta L., Paterson B.M. Targeted disruption of gene function in Drosophila by RNA interference (RNA-i): a role for nautilus in embryonic somatic muscle formation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. P. 1451−1456.
  168. Mittelsten Scheid O., Paszkowsky J., Potrykus I. Reversible inactivation of a transgene in Arabidopsis thaliana II Mol. Gen. Genet. 1991. V. 228. P. 104−112.
  169. Mittelsten Scheid О., Afsar К., Paszkowsky J. Gene inactivation in Arabidopsis thaliana is not accompanied by an accumulation of repeat-induced point mutations 11 Mol. Gen. Genet. 1994. V. 244. P. 325−330.
  170. Mittelsten Scheid O., Afsar K., Paszkowsky J. Release of epigenetic gene silencing by trans-acting mutations in Arabidopsis II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V. 95. P. 632−637.
  171. Mittelsten Scheid O., Paszkowsky J. Transcriptional gene silencing mutants // Plant Mol. Biol. 2000. V. 43. P. 235−241.
  172. Mittelsten Scheid O., Probst A.V., Afsar K., Paszkowsky J. Two regulatory levels of transcriptional gene silencing in Arabidopsis II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002. V. 99. P. 13 659−13 662.
  173. Miura A., Yonebayashi S., Watanabe K. et al. Mobilization of transposons by a mutation abolishing full DNA methylation in Arabidopsis II Nature. 2001. V. 411. P. 212−214.
  174. Mlynarova L., Hricova A., Loonen A., Nap J.P. The presence of a chromatin boundary appears to shield a transgene in tobacco from RNA silencing // Plant Cell. 2003. V.15. P. 2203−2217.
  175. Morel J.B., Vaucheret H. Post-transcriptional gene silencing mutants // Plant Mol. Biol. 2000. V. 43. P. 275−284.
  176. Morel J.B., Mourrain P., Beclin C., Vaucheret H. DNA methylation and chromatin structure affect transcriptional and post-transcriptional transgene silencing in Arabidopsis II Curr. Biol. 2000. V. 10. P. 1591−1594.
  177. Morel J.B., Godon C., Mourrain P. et al. Fertile hypomorphic ARGONAUTE (agol) mutants impaired in post-transcriptional gene silencing and virus resistance // Plant Cell. 2002. V. 14. P. 629−639.
  178. Morino K., Olsen O.A., Shimamoto K. Silencing of an aleurone-specific gene in transgenic rice is caused by a rearranged transgene // Plant J. 1999. V. 17. P. 275−285.
  179. Mourrain P., Beclin C., Elmavan T. et al. Arabidopsis SGS2 and SGS3 genes are required for posttranscriptional gene silencing and natural virus resistance // Cell. 2000. V. 101. P.533−542.
  180. Mueller F., Gilbert J., Davenport G. et al. Homology-dependent resistance: transgenic virus resistance in plants related to homology-dependent gene silencing // Plant J. 1995. V. 7. P. 1001−1013.
  181. Murfett J., Wang X.J., Hagen G., Guilfoyle TJ. Identification of Arabidopsis histone deacetylase HDA6 mutants that affect transgene expression // Plant Cell. 2001. V. 13. P. 1047−1061.
  182. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture // Phisiol. Plant. 1962. V. 15. P.473−493.
  183. Nacry P., Camilleri C., Courtail B. et al. Major chromosomal rearrangements induced by T-DNA transformation in Arabidopsis II Genetics. 1998. V.149. P. 641−650.
  184. Nagy F., Kay S.A., Chua N.-H. Analysis of gene expression in transgenic plants // Plant Mol. Biol. Manual B4. Ed.: Gelvin S.B., Schilperoort R.A. Kluwer Academic Publishers. 1988. P. 1−29.
  185. Napoli C., Lemieux C., Jorgensen R. Introduction of a chimeric chalcone synthase gene into petunia results in reversible co-suppression of homologous genes in trans // Plant Cell. 1990. V.2. P. 279−289.
  186. Neuhuber F., Park Y-D, Matzke A.J.M., Matzke M.A. Susceptibility of transgene loci to homology-dependent gene silencing // Mol. Gen. Genet. 1994. V. 244. № 3. P. 230 241.
  187. Ngo H., Tschudi C., Gull K., Ullu E. Double-stranded RNA induces mRNA degradation in Trypanosoma brucei I I Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V. 95. P. 14 687−14 692.
  188. Novoselia T.V., Deineko E.V., Filipenko E.A., Shumnyi V.K. Expression stability of marker gene nptll in transgenic plants Nicotiana tobacum L. with single T-DNA insertion // Biotechnology and biotechnological equipment. 2001. V.15. N.2. P. 3−7.
  189. Okamoto H., Hirochika H. Silencing of transposable elements in plants // TRENDS in Plant Science. 2001. V. 6. P. 527−533.
  190. Opsahl M.L., McClenaghan M., Springbett A., et al. Multiple effects of genetic background on variegated transgene expression in mice // Genetics. 2002. V. 160. P. 1107−1112.
  191. Palauqui J-C., Vaucheret H. Field trial analysis of nitrate reductase co-suppression: a comparative study of 38 combinations of transgene loci // Plant Mol. Biol. 1995. V. 29. P. 149−159.
  192. Palauqui J.C., Elmayan Т., De Borne F.D. et al. Frequencies, timing, and spatial patterns of co-suppression of nitrate reductase and nitrite reductase in transgenic tobacco plants//Plant Physiol. 1996. V. 112. P. 1447−1456.
  193. Palauqui J-C., Elmayan Т., Pollien J.M., Vaucheret H. Systemic acquired silencing: transgene-specific post-transcriptional silencing is transmitted by grafting from silenced stocks to non-silenced scions // The EMBO J. 1997. V. 16. P. 4738−4745.
  194. Palauqui J.C., Vaucheret H. Transgenes are dispensable for the RNA degradation step of cosuppression // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V. 95. P. 9675−9680.
  195. Pal-Bhadra M., Bhadra U., Birchler J.A. RNAi related mechanisms affect both transcriptional and posttranscriptional transgene silencing in Drosophila II Mol Cell. 2002. V. 9. P. 315−327.
  196. Park Y.-D., Papp I., Moscone E.A. et al. Gene silencing mediated by promoter homology occurs at the level of transcription and results in meiotically heritable alterations in methylation and gene activity // The Plant J. 1996. V. 9. P. 183−194.
  197. Pawlowski W.P., Torbert K.A., Rines H.W., Somers D.A. Irregular patterns of transgene silencing in allohexaploid oat // Plant Mol. Biol. 1998. V. 38. P. 597−607.
  198. Poethig S. Genetic mosaics and cell lineage analysis in plants // Trends in Genetics. 1989. V. 5. P. 273−277.
  199. Potrykus I., Paszkowski J., Saul M. et al. Molecular and general genetics of a hybrid foreign gene introduced into tobacco by direct gene transfer // Mol. Gen. Genet. 1985. V. 199. P. 169−177.
  200. Probst A.V., Fagard M., Proux F. et al. Arabidopsis histone deacetylase HDA6 is required for maintenance of transcriptional gene silencing and determines nuclear organization of rDNA repeats // Plant Cell. 2004. V. 16. P. 1021−1034
  201. Prols F., Meyer P. The methylation patterns of chromosomal integration regions influence gene activity of transferred DNA in Petunia hybrida II Plant J. 1992. V. 2. P. 465−475.
  202. Puchta H. Towards the ideal GMP: homologous recombination and marker gene excision // J. Plant Physiol. 2003. V. l60. P. 743−754.
  203. Qin H., von Arnim A.G. Epigenetic history of an Arabidopsis trans-silencer locus and a text for relay of trans-silencing activity // BMS Plant Biology. 2002. V.2. P. 11−34.
  204. Ratcliff F., Martin-Hernandez A.M., Baulcombe D.C. Tobacco rattle virus as a vector for analysis of gene function by silencing //Plant J. 2001. V. 25. P. 237−245.
  205. Reiss В., Schubert I., Kopchen K. et al. RecA stimulates sister chromatid exchange and the fidelity of double-strand break repair, but not gene targeting, in plants transformed by Agrobacterium II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. V. 97. P. 33 583 363.
  206. Romano N., Macino G. Quelling: transient inactivation of gene expression in Neurospora crassa by transformation with homologous sequences // Mol. Microbiol. 1992. V. 6. P. 3343−3353.
  207. Rossi L., Hohn В., Tinland B. Integration of complete transferred DNA units is dependent on the activity of virulence E2 protein of Agrobacterium tumefaciens II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V. 93. P. 126−130.
  208. Rogers S.O., Bendich A.J. Extraction of DNA from milligram amounts of fresh, herbarium and mummified plant tissues // Plant Mol. Biology. 1985. V.5. P. 69−76.
  209. Rhounim L., Rossignol J.-L., Faugeron G. Epimutation of repeated genes in Ascobolus immersus II The EMBO J. 1992. V. 11. P. 4451−4457.
  210. Rommens C.M., Humara J.M., Ye J. et al. Crop improvement through modification of the plant’s own genome II Plant Physiol. 2004. V. 135. P. 421−431.
  211. Ronemus M.J., Galbiati M., Ticknor C. et al. Demythylation-induced developmental pleiotropy in Arabidopsis II Science. 1996. V. 273. P. 654−657.
  212. Rossignol J.L., Faugeron G. MIP: an epigenetic gene silencing process in Ascobolus immersus II Curr. Top Microbiol. Immunol. 1995. V. 197. P. 179−191.
  213. Richards E.J. DNA methylation and plant development // Trends in Genetics. 1997. V. 13. P. 319−323.
  214. Ruiz M.T., Voinnet O., Baulcombe D.C. Initiation and maintenance of virus-induced gene silencing II Plant Cell. 1998. V. 10. P. 937−946.
  215. Ruiz F., Vayssie L., Klotz C. et al. Homology-dependent gene silencing in Paramecium И Mol. Biol. Cell. 1998. V. 9. P. 931−943.
  216. Sallaud C., Meynard D., van Boxtel J. et al. Highly efficient production and characterization of T-DNA plants for rice (Oryza sativa L.) functional genomics // Theor. Appl. Genet. 2003. V. 106. P. 1396−1408.
  217. Sallaud C., Gay C., Larmande P. et al. High throughput T-DNA insertion mutagenesis in rice: a first step towards in silica reverse genetics // Plant J. 2004. V. 39. P. 450−464.
  218. Salomon S., Puchta H. Capture of genomic and T-DNA sequences during double-strand break repair in somatic plant cells // The EMBO J. 1998. V. 17. P. 6086−6095.
  219. Schmulling Т., Rohrig H. Gene silencing in transgenic tobacco hybrids: frequency of the event and visualization of somatic inactivation pattern // Mol. Gen. Genet. 1995. V. 249. P. 375−390.
  220. Selker E.U. Premeiotic instability of repeated sequences in Neurospora crassa II Annu. Rev. Genet. 1990. V. 24. P. 579−613.
  221. Selker E.U. Epigenetic phenomena in filamentous fungi: useful paradigms or repeat-induced confusion? // Trends Genet. 1997. V. 13. P. 296−301.
  222. Selker E.U., Garrett P.W. DNA sequence duplications trigger gene inactivation in Neurospora crassa И Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. V. 85. P. 6870−6874.
  223. Seymour G.B., Fray R.G., Hill P., Tucker G.A. Down-regulation of two nonhomologous endogenous tomato genes with a single chimeric sense gene construct // Plant Mol. Biol. 1993. V. 23. P. 1−9.
  224. Singer M.J., Selker E.U. Genetic and epigenetic inactivation of repetitive sequences in Neurospora crassa: RIP, DNA methylation, and quelling // Curr. Top Microbiol. Immunol. 1995. V. 197. P. 165−177.
  225. Singer Т., Yordan C., Martienssen R.A. Robertson’s Mutator transposons in A. thaliana are regulated by the chromatin-remodeling gene decrease in DNA methylation (Ddml) // Genes and Development. 2001. V. 15. P. 591−602.
  226. Smith C.J., Watson C.F., Bird C.R. et al. Expression of a truncated tomato polygalacturonase gene inhibits expression of the endogenous gene in transgenic plants // Mol. Gen. Genet. 1990. V. 224. P. 477−481.
  227. Smith H.A., Swaney S.L., Parks T.D. et al. Transgenic plant virus resistance mediated by untranslatable sense RNAs: expression, regulation, and fate of nonessential RNAs // Plant Cell. 1994. V. 6. P. 1441−1453.
  228. Soppe W.J., Jasencakova Z., Houben A. et al. DNA methylation controls histone H3 lysine 9 methylation and heterochromatin assembly in Arabidopsis II The EMBO J. 2002. V. 21. P. 6549−6559.
  229. Srivastava V., Anderson O.D., Ow D.W. Single-copy transgenic wheat generated through the resolution of complex integration patterns // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. P. 11 117−11 121.
  230. Srivastava V., Ow D.W. Single -copy primary transformants of maize obtained through the co-introduction of a recombinase-expressing construct // Plant Mol. Biol. 2001. V. 46. P. 561−566.
  231. Steimer A., Amedeo P., Afsar K. et al. Endogenous targets of transcriptional gene silencing in Arabidopsis II Plant Cell. 2000. V. 12. P. 1165−1178.
  232. Stoutjesdijk P.A., Singh S.P., Liu Q. et al. RNA-mediated targeting of the Arabidopsis FAD2 gene gives highly efficient and stable silencing // Plant Physiol. 2002. V. 129. P. 1723−1731.
  233. Svitashev S.K., Pawlowski W.P., Makarevitch I. et al. Complex transgene locus structures implicate multiple mechanisms for plant transgene rearrangement // Plant J. 2002. V. 32. P. 433−445.
  234. Szabados L., Kovacs I., Oberschall A. et al. Distribution of 1000 sequenced T-DNA tags in the Arabidopsis genome // Plant J. 2000. V. 32. P. 233−242.
  235. Tanzer M.M., Thompson W.F., Law M.D. et al. Characterization of post-transcriptionally suppressed transgene expression that confers resistance to tobacco etch virus infection in tobacco // Plant Cell. 1997. V. 9. P. 1411−1423.
  236. Ten Lohuis M., Muller A., Heidmann I. et al. A repetitive DNA fragment carrying a hot spot for de novo DNA methylation enhances expression variegation in tobacco and petunia // The Plant J. 1995. V. 8. P. 919−932.
  237. Thierry D., Vaucheret H. Sequence homology requirements for transcriptional silencing of 35S transgenes and post transcriptional silencing of nitrite reductase (trans)genes by the tobacco 271 locus // Plant Mol. Biol. 1996. V. 32. P. 1075−1083.
  238. Tinland В., Hohn В., Puchta H. Agrobacterium tumefaciens transfers single-stranded transferred DNA (T-DNA) into the plant cell nucleus // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V. 91. P. 8000−8004.
  239. Tinland B. The integration of T-DNA into plant genomes // Trends in Plant Science. 1996. V. l.P. 178−183.
  240. Todd J.J., Vodkin L.O. Duplications that suppress and deletions that restore expression from a chalcone synthase multigene family // The Plant Cell. 1996. V. 8. P. 687−699.
  241. Ulian E.C., Magill J.M., Smith R.H. Expression and inheritance pattern of two foreign genes in petunia // Theor. Appl. Genet. 1994. V. 88. P. 433−440.
  242. Vance V., Vaucheret H. RNA silencing in plants-defense and counterdefense // Science. 2001. V. 292. P. 2277−2280.
  243. Van Blokland R., ten Lohuis M., Meyer P. Condensation of chromatin in transcriptional regions of an inactivated plant transgene: evidence for an active role of transcription in gene silencing // Mol. Gen. Genet. 1997. V. 257. P. 1−13.
  244. Van Houdt H., Kovarik A., Van Montagu M., Depicker A. Cross-talk between posttranscriptionally silenced neomycin phosphotransferase II transgenes // FEBS Letters. 2000. V. 467. P. 41−46.
  245. Vaucheret H. Promoter-dependent trans-inactivation in transgenic tobacco plants: kinetic aspects of gene silencing and gene reactivation // C.R. Acad. Sci. Paris. 1994. V.316. P.310−323.
  246. Vaucheret H., Palauqui J.C., Elmayan Т., Moffatt B. Molecular and genetic analysis of nitrite reductase co-suppression in transgenic tobacco plants // Mol. Gen. Genet. 1995. V. 248. P. 311−317.
  247. Vaucheret H., Nussaume L., Palauqui J.C. et al. A transcriptionally active state is required for post-transcriptional silencing (cosupression) of nitrate reductase host genes and transgenes // Plant Cell. 1997. V. 9. P. 1495−1504.
  248. Vaucheret H., Elmayan Т., Thierry D. et al. Flank matrix attachment regions (MARs) from chicken, bean, yeast or tobacco do not prevent homology-dependent trans-silencing in transgenic tobacco plants // Mol. Gen. Genet. 1998. V. 259. P. 388−392.
  249. Vaucheret H., Fagard M. Transcriptional gene silencing in plants: targets, inducers and regulators // Trends in genetics. 2001. V. 17. P. 29−35.
  250. Vaucheret H., Beclin C., Fagard M. Post-transcriptional gene silencing in plants // J Cell Sci. 2001. V. 114. P. 3083−3091.
  251. Vedova C.B.D., Cone K.C. Paramutation: the chromatin connection // The Plant Cell. 2004. V. 16. P. 1358−1364.
  252. Voinnet O., Vain P., Angell S., Baulcombe D.C. Systemic spread of sequence-specific transgene RNA degradation in plants is initiated by localized introduction of ectopic promoterless DNA // Cell. 1998. V. 95. P. 177−187.
  253. Vongs A., Kakutani Т., Martienssen R.A., Richards E.J. Arabidopsis thaliana DNA methylation mutants // Science. 1993. V. 260. P. 1926−1928.
  254. Walter C., Broer I., Hillemann D., Puhler A. High frequency, heat treatment-induced inactivation of the phosphinothricin resistance gene in transgenic single cell suspension cultures of Medicago sativa II Mol. Gen. Genet. 1992. V. 235. P. 189−196.
  255. Wang M-B., Waterhouse P.M. High-efficiency of a-glucuronidase gene in rice is correlated with repetitive transgene structure but is independent of DNA methylation // Plant Mol. Biol. 2000. V.43. P. 67−82.
  256. Wassenegger M., Heimes S., Riedel L., Sanger H. RNA-directed de novo methylation of genomic sequences in plants // Cell. 1994. V. 76. P. 567−576.
  257. Wesley S.V., Helliwell C.A., Smith N.A. e/ al. Construct design for efficient, effective and high-throughput gene silencing in plants // Plant J. 2001. V. 27. P. 581−590.
  258. Wianny F., Zernicka-Goetz M. Specific interference with gene function by double-stranded RNA in early mouse development//Nat. Cell Biol. 2000. V. 2. P. 70−75.
  259. Windels P., De Buck S., Van Bockstaele E. et al. T-DNA integration in Arabidopsis chromosomes. Presence and origin of filler DNA sequences // Plant Physiol. 2003. V. 133. P. 2061−2068.
  260. Ye F., Singer E.R. RIGS (repeat-induced gene silencing) in Arabidopsis is not • transcriptional and alters chromatin configuration // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996.1. V.93.P. 10 881−10 886.
  261. Yoo B.-C., Kragler F., Varkonyi-Gasic E. et al. A systemic small RNA signaling system in plants // The Plant Cell. 2004. V. 16. P. 1979−2000.
  262. Yu H., Kumar P.P. Post-transcriptional gene silencing in plants by RNA // Plant Cell Rep. 2003. V. 22. P. 167−174.
  263. Zambryski P., Joos H., Genetello C. et al. Ti-plasmid vector for the introduction of DNA into plant cells without alteration of their normal regeneration capacity // The
  264. Ф EMBO J. 1983. V. 2. P. 2143−2150.
  265. Zhu J., Oger P.M., Schrammeijer B. et al. The bases of crown gall tumorgenesis // J. Bacteriol. 2000. V. 182. P. 3885−3895.
  266. Ziemienowicz A., Tinland В., Bryant J. et al. Plant enzymes but not Agrobacterium VirD2 mediate T-DNA ligation in vitro II Mol. Cell Biol. 2000. V. 20. P. 6317−6322.
  267. Zupan J., Muth T.R., Draper O., Zambryski P. The transfer of DNA from Agrobacterium tumefaciens into plants: a feast of fundamental insights // Plant J. 2000. V. 23. P. 11−28.Ш
Заполнить форму текущей работой

Сдать сессию!