Бакалавр
Дипломные и курсовые на заказ

Влияние света и гормонов на морфогенез юкки слоновой в культуре in vitro

Диссертация: Влияние света и гормонов на морфогенез юкки слоновой в культуре in vitro
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

При рассмотрении совместного действия света и гормонов на синем свету наблюдали увеличение эффекта экзогенного цитокинина, который был добавлен в среду культивирования. На основании полученных данных можно рекомендовать значительное уменьшение концентраций цитокининов при освещении белым светом в сочетании с синим, что будет способствовать уменьшению себестоимости питательной среды. На этапе… Читать ещё >

Содержание

  • 1. СВЕТ И ГОРМОНЫ — РЕГУЛЯТОРЫ МОРФОГЕНЕЗА РАСТЕНИЙ
    • 1. 1. Свет — внешний регулятор морфогенеза растений
      • 1. 1. 1. Фотоконтроль морфогенеза растений в культуре in vitro
      • 1. 1. 2. Влияние света разного спектрального состава на баланс эндогенных гормонов растений в культуре in vitro
      • 1. 1. 3. Участие фоторецепторов в морфогенетических реакциях
    • 1. 2. Фитогормоны и синтетические регуляторы роста растений, их применение в биотехнологии
    • 1. 3. Совместное действие света и экзогенных гормонов на характеристики роста и развития растений в культуре in vitro
      • 1. 3. 1. Влияние света разного спектрального состава на рост растений в присутствии экзогенных гормонов
      • 1. 3. 2. Влияние света разного спектрального состава и экзогенных гормонов на структурно-функциональные характеристики фотосинтетического аппарата
      • 1. 3. 3. Влияние гормонов и света разного спектрального состава на баланс эндогенных гормонов
  • 2. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Ботаническая характеристика вида Yucca elephantipes Regel
    • 2. 2. Методы исследования
  • 3. СВЕТ И ГОРМОНЫ — РЕГУЛЯТОРЫ МОРФОГЕНЕЗА ЮККИ СЛОНОВОЙ В КУЛЬТУРЕ IN VITRO
    • 3. 1. Морфогенез юкки слоновой при различных соотношениях экзогенных гормонов в среде культивирования
    • 3. 2. Морфогенез юкки слоновой при освещении светом разного спектрального состава
    • 3. 3. Влияние качества света и гормонов на морфогенез юкки слоновой в культуре in vitro
  • 4. ВЛИЯНИЕ КАЧЕСТВА СВЕТА И ЭКЗОГЕННЫХ ГОРМОНОВ НА СТРУКТУРНО-ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ ФОТОСИНТЕТИЧЕСКОГО АППАРАТА ЛИСТЬЕВ ЮККИ СЛОНОВОЙ В КУЛЬТУРЕ IN VITRO
    • 4. 1. Мезоструктура листьев юкки слоновой на гормональной и безгормональной среде при освещении светом разного спектрального состава
    • 4. 2. Фотосинтетические пигменты листьев юкки слоновой на гормональной и безгормональной среде при освещении светом разного спектрального состава
  • 5. ГОРМОНАЛЬНЫЙ БАЛАНС ЛИСТЬЕВ ЮККИ СЛОНОВОЙ, СФОРМИРОВАННЫХ НА СВЕТУ РАЗНОГО СПЕКТРАЛЬНОГО СОСТАВА

Влияние света и гормонов на морфогенез юкки слоновой в культуре in vitro (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Известно, что свет разного спектрального состава изменяет гормональный баланс растений (Dorfler, Goring, 1978; Kohler et al., 1980; Baraldi, 1988; Cooke, Saunders, 1975; Cooke, Kendrick, 1976; Холодарь, Чекуров, 1989; Карначук и др., 1990). Наблюдаемые морфологические эффекты, возникающие в растениях под влиянием света разного качества, позволяют провести аналогию с действием гормонов, а добавление экзогенных гормонов способно вызывать многочисленные реакции, которые запускаются фоторецепторами (Кулаева, 1967; Воскресенская и др., 1986; Moore, 1989; Протасова, Кефели, 1982; Константинова и др., 1987; Kieber et al., 1998; Noe et al., 1998). Такое взаимодействие света и гормонов поднимают вопрос о том, действуют ли они независимо или гормоны вовлечены в управление фотоморфогенезом (Su, Howwell, 1995; Chinatkins et al., 1996; Гвоздева, 1997). Выяснение механизмов влияния света, гормонов и их взаимного влияния в регуляции морфогенетических процессов относится к одному из актуальных вопросов биологии развития.

Экзогенные гормоны проявляют свое влияние через изменение баланса эндогенных фитогормонов (Weaver, 1972; Wegler, 1977). При клонировании растений приходится оптимизировать среду культивирования по гормональному составу, что позволяет уменьшить затраты при размножении in vitro.

Культура in vitro является удобной моделью для изучения фоторегуляторных реакций и совместного действия света и экзогенных регуляторов роста. Совместное влияние света и гормонов на растения в культуре in vitro освещено в работах некоторых авторов (Pinker et al., 1985; Геринг и др., 1986; Константинова и др., 1987; Спринчану и др., 1990; Дроздова и др., 2001). Однако данные о влиянии этих факторов на образование пазушных побегов in vitro немногочисленны и противоречивы.

Объект исследования. Юкка слоновая — Yucca elephantipes Regel (семейство Агавовые — Agavaceae) — декоративное растение, перспективная культура промышленного цветоводства. Однако, производство данной культуры в нашей стране ограничено недостаточным количеством посадочного материала. Клональное микроразмножение юкки имеет ряд преимуществ перед традиционными способами размножения: получение генетически однородного посадочного материала, высокий коэффициент размножения, возможность автоматизации процесса выращивания.

Цели и задачи исследования. Целью данной работы являлось выяснение влияния света разного спектрального состава и экзогенных гормонов на морфогенез и гормональный баланс юкки слоновой в культуре in vitro.

Для достижения цели были определены следующие задачи:

1. Изучить особенности действия экзогенных гормонов и света разного спектрального состава на морфогенез юкки слоновой в культуре in vitro.

2. Описать изменения мезоструктуры и количества фотосинтетических пигментов юкки слоновой в культуре in vitro при действии селективного света и экзогенных гормонов.

3. Исследовать влияние качества света на баланс эндогенных гормонов листьев юкки слоновой, выращенной в культуре in vitro.

Научная новизна. Полученные экспериментальные данные вносят вклад в развитие представлений о регуляции морфогенетических процессов светом и гормонами в культуре in vitro. Свет разного спектрального состава изменяет баланс эндогенных гормонов, что позволяет изменить реакцию растения на экзогенные гормоны. Красный свет при кратковременном культивировании побегов юкки слоновой способствует быстрому укоренению растений, что сопряжено с изменением баланса эндогенных гормонов — повышением содержания индолилуксусной кислоты и гиббереллинов. При длительном культивировании на красном свету наблюдается высокий уровень абсцизовой кислоты. Синий свет тормозит рост листьев и корней юкки слоновой в культуре in vitro в длину, что сопряжено с изменением баланса эндогенных гормонов — снижением уровня гиббереллинов, повышением цитокининов и абсцизовой кислоты.

Наблюдаются аналогичные изменения мезоструктуры, роста листьев и корней юкки слоновой в культуре in vitro под воздействием синего света и бензиламинопурина, а также красного света и нафтилуксусной кислоты. Однако, сходство данных факторов отсутствует при исследовании содержания фотосинтетических пигментов.

Определены оптимальные условия микроразмножения юкки слоновой.

Практическая значимость. Показано, что при освещении светом разного спектрального состава возможно уменьшение концентраций гормонов или их полное исключение из среды культивирования, что позволяет сделать среду культивирования более дешевой. На основе результатов, полученных в данной работе, можно рекомендовать использование белых и синих люминесцентных ламп на этапе микроразмножения юкки слоновой для активации пазушных меристем, а также белых и красных — при укоренении in vitro.

На защиту выносятся следующие основные положения:

1. Свет разного спектрального состава изменяет баланс эндогенных гормонов, что позволяет изменить реакцию растения на экзогенные гормоны.

2. Существует сходство действия синего света и экзогенных цитокининов, а также красного света и ауксинов на мезоструктуру, рост листьев и корней юкки слоновой в культуре in vitro. Однако, сходство данных факторов отсутствует при исследовании содержания фотосинтетических пигментов.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на XXXIX и XL Международной студенческой научной конференции «Студент и научно-технический прогресс» (Новосибирск, 2001;2002) — I и II Международной научной конференции молодых ученых и студентов «Актуальные вопросы современной биологии и биотехнологии» (Алматы, 8.

Казахстан, 2001;2002) — IV Международной конференции «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях» (Москва, 2001), 17-ом Международном конгрессе ростовых веществ растений (Брно, Чехия, 2001) — Молодежной конференции «Исследования молодых ботаников Сибири» (Новосибирск,.

2001) — II и III Международной конференции молодых ученых и студентов «Актуальные проблемы современной науки» (Самара, 2001;2002) — Международная конференция студентов, аспирантов и молодых ученых «IV Сибирская школа молодого ученого» (Томск, 2001) — 6-й Пущинской школы-конференции молодых ученых «Биология — наука 21 века» (Пущино, 2002) — Международной конференции «Современные проблемы интродукции растений и сохранение биоразнообразия экосистем» (Черновцы, Украина,.

2002).

Публикации. По теме работы было опубликовано 2 статьи и 13 тезисов.

Объем и структура работы. Диссертационная работа изложена на 133 страницах, содержит 41 рисунок и 15 таблиц. Работа состоит из введения, пяти глав (обзора литературы, описания объекта и методов исследования, результатов экспериментов), заключения, выводов и списка использованной литературы (103 работ на русском языке, 130 — на иностранных языках).

109 ВЫВОДЫ.

1. При действии экзогенных гормонов и света на мезоструктуру листьев юкки слоновой наблюдается сходство между эффектами, которые они вызывают. Синий свет, так же как и бензиламинопурин, уменьшает объем клеток мезофилла и увеличивает число клеток на единицу площади. Красный свет и нафтилуксусная кислота уменьшают толщину мезофилла, что приводит к формированию тонких листьев.

2. Красный свет, так же как и бензиламинопурин, уменьшает количество фотосинтетических пигментов. Синий свет увеличивает содержание всех фотосинтетических пигментов. Нафтилуксусная кислота увеличивает содержание только хлорофиллов.

3. Красный свет при кратковременном культивировании побегов юкки слоновой в культуре in vitro способствует быстрому укоренению растений, что сопряжено с изменением баланса эндогенных гормонов в листьях — повышением содержания индолилуксусной кислоты и гиббереллинов. При длительном культивировании на красном свету наблюдается высокий уровень абсцизовой кислоты.

4. Синий свет тормозит рост листьев и корней юкки слоновой в культуре in vitro в длину, что сопряжено с изменением баланса эндогенных гормонов — снижением уровня гиббереллинов, повышением цитокининов и абсцизовой кислоты.

5. Показано, что оптимальной средой для юкки слоновой на этапе микроразмножения является среда с 1,5 мг/л бензиламинопурина и 0,1 мг/л нафтилуксусной кислоты, на этапе укоренения in vitro — с 0,5 мг/л нафтилуксусной кислоты.

6. Длительное освещение белым светом в сочетании с синим увеличивает уровень цитокининов в листьях юкки слоновой, что позволяет в несколько раз уменьшить концентрацию экзогенного цитокинина в среде культивирования in vitro.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Юкка слоновая является перспективной культурой промышленного цветоводства. Однако, производство данной культуры в нашей стране ограничено недостаточным количеством посадочного материала. Клональное микроразмножение юкки имеет ряд преимуществ перед традиционными способами размножения: получение генетически однородного посадочного материала, высокий коэффициент размножения, возможность автоматизации процесса выращивания.

В ходе работы были определены оптимальные условия размножения юкки слоновой в культуре in vitro. Известно, что растения характеризуются более высокой регенерационной способностью при культивировании на среде со смесью цитокининов и ауксинов по сравнению с использованием одного цитокинина (Дмитриева, 1981; Высоцкий, Упадышев, 1992; Tao et al., 1998; Thimmapaiah, 1999). Поэтому для повышения регенерационной способности юкки слоновой было изучено соотношение цитокининов и ауксинов в разных концентрациях. На среде с 1,5 мг/л бензиламинопурина и 0,1 мг/л нафтилуксусной кислоты наблюдалось наибольшее количество боковых побегов, их высота и масса. Применение 0,5 мг/л нафтилуксусной кислоты способствовало сокращению этапа укоренения in vitro на 2 недели.

Результаты наших опытов показали влияние красного и синего света на морфогенез и уровень эндогенных гормонов листьев юкки слоновой, культивируемой in vitro. При культивировании побегов юкки слоновой на красном свету повышается содержание индолилуксусной кислоты и гиббереллинов, что способствует быстрому укоренению. Однако, длительное освещение красным светом угнетало рост побега, образование хлорофилла и развитие мезофилла листа. Причиной угнетения роста, вероятно, является повышение уровня свободной абсцизовой кислоты в 2 раза при длительном выращивании на красном свету. В варианте с освещением белым светом в сочетании с красным отмечали активное развитие побега и корней.

Было установлено, что синий свет не снимал апикального доминирования, поэтому новые побеги не формировались. Однако, есть ряд сведений о том, что синий свет поддерживал пазушное размножение побега (Chee, 1986; Baraldi, 1988). В нашей работе такой эффект наблюдался только с экзогенными цитокининами в среде. По-видимому, при действии синего света образовывалось достаточное количество цитокининов для торможения роста корней, но малое — для снятия апикального доминирования.

В процессе взаимодействия растения со светом создается определенное соответствие между физиологическими функциями и формированием анатомических структур. Нарушение нормального режима жизнедеятельности растения вызывает его ответную реакцию и соответствующую структурную перестройку. Лист, как наиболее пластичный орган, реагирует на изменение условий освещения в первую очередь. При исследовании мезоструктуры листа растений юкки слоновой обнаружили, что на белом свету развивался лист с максимальной толщиной, а на красном свету — с минимальной. Тонкие листья, сформированные на красном свету, наблюдали и другие авторы (Карначук и др., 1987; Ушакова и др., 1992). При длительном освещении красным светом происходило торможение развития листа. При этом формировалось не шесть, а только пять слоев губчатой паренхимы. Количество фотосинтетических пигментов на красном свету уменьшалось, а на синем — увеличивалось.

При рассмотрении совместного действия света и гормонов на синем свету наблюдали увеличение эффекта экзогенного цитокинина, который был добавлен в среду культивирования. На основании полученных данных можно рекомендовать значительное уменьшение концентраций цитокининов при освещении белым светом в сочетании с синим, что будет способствовать уменьшению себестоимости питательной среды. На этапе укоренения in vitro возможно полное исключение нафтилуксусной кислоты из среды при действии белого света в сочетании с красным.

Таким образом, полученные экспериментальные данные вносят вклад в развитие представлений о регуляции морфогенетических процессов растений в культуре in vitro светом и гормонами и могут быть использованы при получении посадочного материала юкки слоновой в промышленных масштабах.

Показать весь текст

Список литературы

  1. P.A., Собянина Е. А. Фотосинтетический метаболизм и синтез фитогормонов // Фотосинтетический метаболизм. Свердловск: УрГУ, 1983. — С.74−87.
  2. Р.Г. Экспериментальный морфогенез и дифференциация в культуре клеток. М.: Наука, 1971.-51 с.
  3. Р.Г., Ничипорович A.A., Протасова H.H. Физиологическая активность продуктов фотосинтеза растений, экспонированных на свету разного спектрального состава // Физиология растений. 1961. — Т. 8, вып. 2. -С. 153−160.
  4. Н.Г., Бондар В. В., Дроздова И. С. Действие низкоинтенсивного синего и красного света на содержание хлорофиллов, а и b и световые кривыефотосинтеза у листьев ячменя // Физиология растений. -1998.-Т. 45.-С. 507−512.
  5. Ван дер Вин Р., Мейер Г. Свет и рост растений. М.: Сельхозиздат, 1962.-200 с.
  6. Н.П. Фотосинтез и спектральный состав света. М.: Наука, 1965.-311 с.
  7. Н.П. Принципы фоторегулирования метаболизма растений и регуляторное действие красного и синего света на фотосинтез //
  8. Фоторегуляция метаболизма и морфогенеза растений. М.: Наука, 1975. -С. 16−36.
  9. Н.П. Фоторегуляторные аспекты метаболизма растений. М.: Наука, 1979. — 48 с.
  10. Н.П., Нечаева В. П. Действие синего, красного и зеленого света на содержание белка, нуклеиновых кислот и хлорофилла в молодых растениях ячменя // Физиология растений. 1967. — Т. 14, вып. 2. — С. 299−308.
  11. Н.П., Нечаева В. П., Власова М. П., Ничипорович A.A. Значение синего света и кинетина для восстановления фотосинтетического аппарата стареющих листьев ячменя // Физиология растений. 1986. — Т.15, вып. 5. — С. 890−897.
  12. В.А., Упадышев М. Т. Регенерация вегетативных органов листовыми дисками и другими эксплантами рода Rubrus in vitro // Физиология растений. 1992. -Т.39, вып. 3. — С. 584−590.
  13. Гаманец J1.B., Гамбург К. З., Швецов С. Г., Рекославская H.H. Взаимодействие ауксина и цитокинина в регуляции роста культуры семядольного каллуса сои // Физиология и биохимия культ, растений. 1989. Т. 21.-№ 2.-С. 147−153.
  14. К.З. Биохимия ауксина и его действие на клетки растений. Новосибирск: Наука, 1976. — 271 с.
  15. Е.С. Фоторегуляция роста и гормонального баланса пшеницы на ранних этапах онтогенеза и в культуре зародышевой ткани: Автореф. дис. канд. биол. наук. Томск, 1997. — 18 с.
  16. X., Цоглауер К., Гоффманн В., Пинкер И. Влияние ауксина и красного света на корнеобразование у побегов березы in vitro // Культура клеток растений и биотехнология. М.: Наука, 1986. — С. 106−110.
  17. Д. Р. О., Уитмарш Д. Фотосинтез. М.: Мир, 1987.-Т. 1.-727 с.
  18. И.Ф., Карначук P.A. Практикум по физиологии растений Ростовые вещества. Томск: Изд-во Томского университета, 1995.- 113 с.
  19. И.Ф., Карначук P.A. Свет и растение. Томск: Изд-во Томского университета, 1999. — 100 с.
  20. Т.К. Фотосинтетический аппарат и условия среды. J1.: Изд-во ЛГУ, 1989.- 183 с.
  21. Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений. Т. 2. -М.:Мир, 1986.-312 с.
  22. К. Гормоны растений. Системный подход. М.: Мир, 1985.-304 с.
  23. H.H. Взаимодействие фитогормонов в процессе индукции клеточных делений // Регуляторы роста и развития растений. М.: Наука, 1981а.-С. 44−46.
  24. H.H., Винникова Н. В., Бигальке Х. М. и др. // Саморегуляция метаболизма растений. София, 1981. — С. 216−222.
  25. И.С., Бондар В. В., Бухов Н. Г., Котова JI.M., Маевская С. Н., Мокроносов А. Т. Влияние спектрального состава света на морфогенез и донорно-акцепторные отношения у растений редиса // Физиология растений. -2001. Т. 48, вып. 4. — С. 485−490.
  26. А.И. Влияние качества света и гиббереллина на активность нитратредуктазы, содержание белка и хлорофилла в проростках ячменя // Особенности гормонального регулирования роста растений. -М.Д973.-С. 86−94.
  27. А.И. Микрометод определения Сахаров // Метод биохимического исследования растений. -JI.: Колос, 1972. С. 145−146.
  28. E.H., Ушакова С. А., Волкова Э. К., Тихомиров A.A., Могильная O.A., Медведева С. Е. Тонкая структура хлоропластов листьев огурца и гороха, сформировавшихся на красном свету // Физиология растений. 2000. — Т. 47, № 6. — С. 843−851.
  29. М.Н. Светорегуляция вторичного метаболизма растений // Физиология растений. 1987. — Т. 34, вып. 4. — С. 698−711.
  30. С.С. Оценка биологической активности экстрактов из листьев растений, выращенных на свету разного спектрального состава // Физиология растений. 1969. — Т. 16, вып. 2. — С. 196−204.
  31. А.Б., Анцыгина JI.JL, Ярин А. Ю. Современные аспекты изучения фитогормонов //Цитология. 1999. № 10. — С. 835−847.
  32. P.A. Регуляторная роль света разного спектрального состава в процессах роста и фотосинтетической активности листа растений: Автореф. дис. д-ра биол. наук. -М., 1989. 42 с.
  33. P.A., Протасова H.H., Головацкая И. Ф. Рост растений и содержание гормонов в зависимости от спектрального состава света // Рост и устойчивость растений. Новосибирск: Наука, 1988.-С.71.
  34. P.A., Протасова H.H., Добровольский М. В., Ревина Т. А., Ничипорович A.A. Физиологическая адаптация листа левзеи к спектральному составу света // Физиология растений. 1987. — Т.34, вып. 1. — С. 51−59.
  35. P.A., Негрецкий В. А., Головацкая И. Ф. Гормональный баланс листа растений на свету разного спектрального состава // Физиология растений. -1990. Т.37, вып. 3. — С.527−534.
  36. P.A., Тищенко С. Ю., Головацкая И. Ф. Эндогенные фитогормоны и регуляция морфогенеза Arabidipsis thaliana синим светом // Физиология растений. -2001. Т.48, № 2. — С. 262−267.
  37. П.А. Возможности использования культуры тканей юкки для получения стероидных гликозидов // Доп. Нац. АН Украши. 2000. -№ 9.-С. 180−185.
  38. Н.В. Гормональная регуляция микроклонального размножения растений // Рост растений и пути его регулирования. М.: Наука, 1981.-С. 150−151.
  39. H.B. Параметрическое регулирование морфогенеза и клонального микроразмножения растений на примере герберы и фрезии: Автореф. дис. канд. биол. наук. М., 1982. — 24 с.
  40. A.B. Формирование фотосинтетического аппарата некоторых растений при низких и насыщающих интенсивностяз света // Оптимизация фотосинтетического аппарата воздействием различных факторов. Минск: Изд-во БГУ, 1976. — С. 12−20.
  41. JI.B. Фотосинтетический аппарат и световой режим. -Минск: Изд-во БГУ, 1980. 142 с.
  42. В.И., Турецкая Р. Х. Метод определения свободных ауксинов и ингибиторов в растительном материале // Методы определения регуляторов роста и гербицидов. М.: Наука, 1966. — С. 20−44.
  43. В.И. Рост и морфогенез // Физиология растений. 1987. -Т.34, вып. 4.-С. 685−697.
  44. В.И., Коф Э.М., Власов П. В., Кислин E.H. Природный ингибитор роста абсцизовая кислота. М.: Наука, 1989. — 184 с.
  45. А.Ф. Растение и свет. М.: Изд-во АН СССР, 1954.456 с.
  46. С., Геринг X. Регуляция метаболизма первичных и вторичных продуктов фотосинтеза. Пущино, 1983. — С. 45−56.
  47. Т.Н., Аксенова Н. П., Сергеева Л. И., Чайхалян М. Х. Взаимное влияние света и гормонов на регуляцию морфогенетических процессов в культуре in vitro // Физиология растений. 1987. — Т. 34, вып. 4. — С. 795−802.
  48. JI.A., Бутенко Р. Г. Развитие апикальных меристем томата in vitro в условиях воздействия светом разного спектрального состава // Физиология растений. 1992. -Т.39, вып. 2. — С.353−364.
  49. С.М., Ляшенко В. Н., Бухов Н. Г., Воскресенская Н. П. Влияние света различного спектрального состава на организацию пигментного аппарата хлоропластов // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1987. — № 6.-С. 902−911.
  50. Г. Р., Веселов С. Ю., Каравайко H.H. и др. Иммуноферментная тест-система для определения цитокининов // Физиология растений. 1990. — Т.37, вып. 1. — С. 193−199.
  51. О.Н. Цитокинины и их физиологическое действие // Успехи совр. биологии. 1967. — Т. 63, вып. 1. — С. 28−53.
  52. О.Н. Цитокинины, их строение и функции. М.: Наука, 1973.-264 с.
  53. Ф.М. Развитие «короткодневных» и «длиннодневных» растений в зависимости от спектрального состава света и продолжительности фотопериода // Морфогенез растений. М.: МГУ, 1961. — Т. 2. — С. 411−418.
  54. Г. Ф. Биометрия. М.: Высш. школа, 1980. — 293 с.
  55. А.И., Томарадзе Г. Н., Сургуладзе С. Т. Влияние некоторых фитогормонов на рост культуры тканей тополя и образование в ней хлорофилла // Изв. АН СССР. Серия Биология. 1986. — С. 129−134.
  56. Логинова (Немойкина) А. Л. Оптимизация среды культивирования in vitro юкки слоновой // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях: тезисы докладов 6-ой Международной конференции. М.: Изд-во МСХА, 2001. — С. 175.
  57. В.Н., Хлопенкова Л. П., Чайлахян М. Х. Определение природных гиббереллинов в растительных тканях // Методы определенияфитогормонов, ингибиторов роста, дефолиантов и гербицидов. М.: Наука, 1979. С.50−58.
  58. Г. Б., Гамбург К. З., Акимова Г. П., Леонов JI.A. Влияние гиббереллина на рост каллусной ткани табака суспензиальной культуре // Культура изолированных органов, тканей и клеток растений. М.: Наука, 1970.-С. 203−204.
  59. А.Т. Онтогенетический аспект фотосинтеза. — М.: Наука, 1981.- 196 с.
  60. Г. С., Агнистикова В. Н. Гиббереллины. М.: Наука, 1984.-208 с.
  61. Негрецкий В. А Методические рекомендации по определению цитокининов // Методические рекомендации по определению фитогормонов. -Киев: Наук, думка, 1988. С. 31.
  62. А.Л. Влияние синего света на морфогенез и количество фитогормонов Yucca elephantipes в культуре in vitro // Международная конференция «IV Сибирская школа молодого ученого». Томск: ТГПУ, 2001.-С.58.
  63. JI. Дж. Регуляторы роста растений. Применение в сельском хозяйстве. -М.: Колос, 1984. 192 с.
  64. А.М. Культура клеток высших растений уникальная система, модель, инструмент // Физиол. Растений. — 1999. — Т. 46, № 6. — С. 837−844.
  65. О.П. Взаимосвязь структуры и функции фотосинтетического аппарата // Биохимия и биофизика фотосинтеза. М.: Наука, 1965. — С.146−160.
  66. И.К. Фототрофная неморфогенная суспензионная культура клеток мандрагоры туркменской // Тезисы II Межд. конф. «Биология культивируемых клеток растений и биотехнология». М., 1993. -С. 25.
  67. B.C. Влияние световых условий выращивания на рост и некоторые стороны ауксинового обмена культур изолированых тканей моркови: Автореф. дис. канд. биол. наук. М., 1967. — 17 с.
  68. B.C., Бутенко Р. Г. Значение спектрального состава света для деления и растяжения клеток культуры ткани моркови // ДАН СССР. -1966.-Т. 169, № 3.-С. 721−723.
  69. В.В. Фитогормоны. Л.: Изд-во ЛГУ, 1982. — 247 с.
  70. Е.А. Старение и омоложение побегов при микроклональном размножении на примере Hedera helix и Coriandum sativum L. // Автореф. дис. канд. биол. наук. -М., 1992. 21 с.
  71. Н.Н. Свет как фактор регуляции фотосинтеза и роста растений // Рост растений и дифференцировка. М.: Наука, 1981. — С. 245 253.
  72. П.Ф. Биологическая статистика. Минск: Высш. школа, 1973.-320 с.
  73. С.Г. Оранжерейные и комнатные растения и уход за ними. -Л.: Наука, 1983.-С. 96−98.
  74. Э.П. Методы количественного определения гиббереллинов в растительных объектах // Рост растений и природные регуляторы. -М.: Наука, 1977. С. 105−121.
  75. М.А., Кириллова Н. В., Комов В. П. Исследование ростовых и биосинтетических свойств культивируемых клеток юкки славной // Тезисы докл. Всерос. симп. «Биология клетки в культуре» С.-Петербург, 1998.-С. 315−316.
  76. K.M. Физиология листа. М.: Наука, 1978. — 392 с.
  77. Дж., Теппермен X. Физиология обмена веществ и эндокринной системы. Вводный курс. М.: Мир, 1989. — 247 с.
  78. О.И. Рост растений и физиологически активные вещества. -Киев: УМК ВО, 1990. 52 с.
  79. С.Ю. Роль синего света в регуляции роста, морфогенеза и баланса эндогенных фитогормонов Arabidopsis thaliana (L.) Heynh.: Автореф. дис. канд. биол. наук. Томск, 2000. — 16 с.
  80. A.A., Лисовский Г. М., Сидько Ф. Я. Спектральный состав света и продуктивность растений. Новосибирск: Наука, 1991. — 167 с.
  81. Тихомиров А. А, Шарупич В. П., Лисовский Г. М. Светокультура растений: биофизические и биотехнологические основы. Новосибирск: Изд-во Сиб. отд. РАН, 2000. 201 с.
  82. Ф., Филлипс Н. Рост растений и дифференцировка. М.: Мир, 1984.-512 с.
  83. С.А., Волкова Э. К., Шалаева Е. Е., Тихомиров A.A. Фотосинтез, дыхание и продуктивность ценоза редиса, выращенного на красном и синем свету // Физиология растений. 1992. — Т.39, вып. 3. — С. 488−493.
  84. ХоДоренко Л.А., Шульгин H.A. Влияние различных условий освещения на морфологическую структуру листьев редиса // Науч. докл. высш. школы. Биол. Науки. 1964. — Вып. 3. — С. 149−153.
  85. В.А., Чекуров В. М. Активность гиббереллинподобных веществ в этиопластах мягкой пшеницы после облучения красным светом // Физиология растений. 1989. — Т.36, вып.З. — С .538−543.
  86. В.А., Шевцов С. В., Чекуров В. М. Применение иммунноферментного анализа для изучения фоторегуляции уровня гиббереллинов в этиопластах пщеницы // Физиология растений. 1995. -Т.42, вып.4. — С.647−651.
  87. Ю.Л. Физиологические основы теневыносливости древесных растений. М.: Наука, 1978. — 215с.
  88. Л.Н., Мелик-Саркисов О.С., Андрейко Т. Н. и др. Газообмен и фотосинтез растений картофеля в условиях in vitro // Докл. АН СССР. Серия Физиол. растений, 1991. С. 1020−1024.
  89. М.Х. Регуляция цветения высших растений. М.: Наука, 1988. — 559 с.
  90. B.C., Дегтярев С. В., Артамонова Г. М. и др. Сельскохозяйственная биотехнология. М.: Изд-во МСХА, 1995. -310 с.
  91. А.А. Определение хлорофиллов и каротиноидов в экстрактах зеленых листьев // Биохимические методы в физиологии растений. -М: Наука, 1971. С. 154−171.
  92. И.А. Растение и солнце. Л.: Гидрометеоиздат, 1973. — 252 с.
  93. Ahmad М., Cashmore A.R. HY4 gene of Arabidopsis thaliana encodes a protein with characteristics of a blue-light photoreceptor // Nature. -1993.-V. 306.-P. 162−166.
  94. Ahmad M., Cashmore A.R. The blue-light receptor cryptochrome I shows functional dependence on phytochrome A and phytochrome В in Arabidopsis thaliana // Plant J. 1997. — V. 11. — P. 421−427.
  95. Altmann T. Molecular physiology of brassinisteroids revealed by the analysis of mutants // Planta. -1999. Bd.208, № 1. — S. 1−17.
  96. Appelgten M.: Effect of light quality on stem elongation of Pelargonium in vitro // Scientia Hon. 1991. — У. 45. — P. 345−351.
  97. H., Finke L. // Biochem. und Physiol. Pflanz. 1978. — Bd. 172.-S. 181−187.
  98. Bagnall D J, King R.W., Hangarter R.P. Blue-light promotion of flowering is absent in hy4 mutants of Arabidopsis // Planta. 1996. — Bd. 200. — S. 268−280.
  99. Baraldi R., Rossi F., Lercari B. In vitro shoot development of Prunus GF 655−2: interaction between light and benzyladenine // Physiol. Plant. 1988. -V. 74.-P. 440−443.
  100. Barciszewski J., Rattan S. I., Siboska G., Clark B.F. Kinetin 45 years on // Plant Sei. — 1999. — 148, № 1. — C. 37−45.
  101. Barro F., De La Haba P., Maldonado J.M., Fontes A.G. Effect of light quality on growth, contents of carbohydrates, protein and pigments, and nitrate reductase activity in soybean plants // J. Plant Physioi. 1989. — V. 134. — P. 586 591.
  102. N., Fonderville J.C. // Physiol. Plant. 1980. — V. 50. -P. 153−167.
  103. Biddington N.L., Thomas T.H. A modified amaranthum betacyanin bioassay for the rapid determination of cytokinins in plant extracts // Planta. -1973.-V. Ill, № 2.-P. 183−186.
  104. Bjorn L.O. Introduction. In: Kendrick, R.E., Kronenberg, G.H.M. Photomorphogenesis in Plants. — Dordrecht — Boston — Lancaster: Martinus Nijhoff Publishers, 1986.-P. 3−14.
  105. Black M., Vlitos A. J. Possible interrelationships of phytochrome and plant hormones // Phytochrome. 1972. — P. 518—550.
  106. G.W., Quail P.H. // Planta. 1982. — V. 155, № 3. — P. 212 218.
  107. H. // Planta. 1972. — Bd. 106. — S. 325−332.
  108. Briggs W. R. Red light, auxin relationships and the phototropic responses of corn and oat coleoptiles // Amer. j. hot. 1963. — V. 50. — P. 196−207.
  109. Bruinsma J. Effects of auxins and cytokinins on the growth of discs of parenchymous tissues // Acta bot. Neerl. 1967. — V. 16, № 4. — P. 153−155.
  110. Buchov N.G., Grozdova I.S., Bondar Y.V., Mokronosov A.T. Blue, red and blue plus red light control of chlorophyll content and CO2 gas exchenge in Barley leaves // Physiol Plant. 1992. — V. 85. — P. 632−639.
  111. Chee R. In vitro culture of Vitis: The effects of light spectrum, manganese sulfate, and potassium iodide on morphogenesis // Plant Cell Tissue Organ Cult. 1986.-V. 7.-P. 121−134.
  112. Chee R, Pool R.M. Morphogenic responses to propagule trimming, spectral irradiance, and photoperiod of grapevine shoots recultured in vitro // J. amer. Soc. hort. Sci. 1989. -V. 114. — P. 350−354.
  113. Chinatkins A.N., Craig S., Hocart C.H., Dennis E.S., Chaudhury A.M. Increased endogenous cytokinin in the Arabidopsis ampl mutant corresponds with deetiolation responses // Planta. 1996. — V. 198. — P. 549−556.
  114. Chory J., Reinecke D., Sim S., Washburn T., Brenner M. A Role for cytokinins in de-etiolation in Aradopsis det mutants have an altered response to cytokinins // Plant Physiol. 1994. — V. 104, № 2. — P. 339−347.
  115. Coleman W.K., Greyson R.I. Root regeneration from leaf plastochron index and responces to exogenous gibberellic acid // J. Exp. Bot. 1976. — V. 27, № 1. — P. 1139−1152.
  116. Collin H.A. Determinants of yield of secondary products in plant tissue cultures // Advances in botanical research. V. 13. — London: AP. 1987. -P.145−187.
  117. Cooke R.J., Saunders R.F. Phytochrome mediated changes in extractable gibberellin activity in cell free system from etiolated wheat leaves // Planta. 1975. — V. 123, № 4. — P. 299−302.
  118. Cooke R.J., Kendrik R.E. Phytochrome controlled gibberellins metabolism in etioplasts envelopes // Planta. 1976. — V. 131, № 3. — P. 303−306.
  119. Cosgrove D. Repid suppression of growth by blue light: occurrence, time course, and general Characteristics // Plant Physiol. 1981. — V. 67. — P. 584 590.
  120. Cosgrove DJ. Photomodulation of growth. In: Kendrick R.E., Kronnenberg G.H. Photomorphogenesis in Plants. Dordrecht-Boston-Lancaster: Martin Nijhoff Publishers, 1986. — P. 23−34.
  121. Dallessandro G., Roberts L. W. Induction of xylogenesis in pith parenchima explants of Lactuca // Amer. J. Bot. 1971. — Vol. 58, N 4. — P. 378 385.
  122. Davies P.J. Plant hormones: physiology, biotechemistry and molecular biology. Kluwer, Dordrecht, 1995. — 560 p.
  123. Digby J., Thomas T. H., Wareing P. F. Promotion of cell division in tissue cultures by gibberellic acid // Nature. 1964. — Vol. 203, N 4944. — P. 547 548.
  124. Dorfler M., Goring H. Der Einfluss verscheidener Licht- qualitat (Blau und Rotlicht) auf den Cytokinin gehalt von Kurbisjugpflanzen // Biol. Rdsch. 1978. — V. 16,№ 3.-S. 186−188.
  125. Earle E. D., Torrev J. G. Colony formation by isolated Convolvolus cells plated on defined media // Plant Physiol. 1965. — V. 40, N 3. — P. 520−528.
  126. Economou A.S., Read P.E. Light treatments to improve efficiency of in vitro propagation systems // HortScience. 1987 — V. 22. — P. 751−754.
  127. Epstein E., Lavee S. Uptake and fate of IAA in apple callus tissue using IAA-1−14C // Plant Cell Physiol. 1975. -V.16, № 4. — P. 553−561.
  128. Feurkranz H.A., Nowak C.A., Magnard C.A. Light effects on in vitro adventition root formation in axillary shoots of mature Prumus sirotina // Physiol. Plant. 1990. -V. 80, № 3. — P. 337−341.
  129. Fry S. C., Street H. E., Gibberellin-sensitive suspension cultures // Plant Physiol. 1980. — Vol. 65, N 3. — P. 472−477.
  130. Fuglevand G., Jackson J.A., Jenkins G.I. UV-A, UV-B and blue light signal transduction pathways interact synergistically to regulate chalcone syntase gene expression in Arabidopsis // Plant Cell. 1996. — V. 8. — P. 2347−2357.
  131. Furuya M. Biochemistry and physiology of phytochrome // Progr. Phytochem. 1968. -V. 1. — P. 347−386.
  132. Galston A.W., Satter R.L. Light ant Plant. London: Dev. London, 1976.- 156 p.
  133. George E.F. Factors affecting growth and morphogenesis // Plant Propogation by Tissue Culture. 1993. — P. 184−231.
  134. Generalova Y.N., Berestetzky V.A., Vedenicheva N.P., Musatenko L.I., Sytnik K.M. Phitohormones of developing seeds with different types of dormancy // In: 15th Int Bot. Congr. Yokogama, 1993. — P. 441.
  135. Gil J., Garcia-Martinez J.L. Light regulation of gibberellin biosynthesis gene expression in Pea // In: 17th International Conference on Plant Growth Substances. Brno: Published by Mendel University of Agriculture and Forestry, 2001.-P. 130.
  136. Gordon S.A. The biogenesis of auxin // Encycl. Plant Physiol. -1982.-V. 14.-P. 620−632.
  137. R., Sprit C.J. //Planta. 1972. — Bd. 108. — S. 203−210.
  138. W. // Planta. 1959. — Bd. 53. — S. 484−493.
  139. Hedden P., Kamiya Y. Gibberellin biosynthesis: enzymes, genes and their regulation // Annu. Rev. Plant Physiol. 1997. — V. 48. — P. 431−460.
  140. Heide O.M. Effects of light and temperature on the regeneration ability of Begonia leaf cuttings // Physiol.plant. 1974. — V. 29. — № 1. — P. 189 193.
  141. Hershey H.P., Barker R.F., Idler K.B. et al. // Nucl. Acid. Res. -1985.-V. 13, № 23.-P. 8543.
  142. Hoffman P.D., Batschauer A., Hays J.B. PHH1, a novel gene from Arabidodsis thaliana that encodes a protein similar to plant blue light photoreceptors and microbial photolyases // Mol. Gen. Genet. 1996. — V. 253. -P. 259−265.
  143. Holdgate D.R. Plant cell, tissue and organ culture. Berlin: SpringerVerl., 1977.-P. 18−43.
  144. Ino M. Photoregulation of auxin biosinthesis and transport // Pap. Annual Meeting and Symposia. Kyoto, 1999. — P. 5.
  145. Iwasaki T., Fukuda H., Shibaoka H. Inhibition of cell division and DNA synthesis by gibberellin in isolated Zinnia mesophyll cells // Plant Cell Physiol. 1980. — V. 27, N 4. — P. 717−724.
  146. Jackson J.A., Jenkins G.I. Extension-growth responses and expression of flavonoid biosynthesis genes in the Arabidopsis hy4 mutant // Pianta. 1995. -Bd.197.-S. 233−239.
  147. Jacobs G., Allan P., Bornman C. H. Tissue culture studies on rose: Use of shoot tip explants. III. Auxin-gibberellin effects // Agroplantae. 1970. -Vol. 2, N 2. — P. 45−49.
  148. Jakubowska A., Kowalczyk S. Kwas abscysynowy percepcja I transdukcja sygnalu // Post.boil.komorki. — 2000. — V. 27, № 4. — C. 633−656.
  149. Jino M. Inhibitory action of red light on the growth of the maize mesocotyl: evaluation of the auxin hypothesis // Pianta. 1982. — V. 156. — P. 388 395.
  150. Kefeli V.J. Natural plant growth inhibitors and phytohormones. -Junk, Den Haag, 1978. 234 p.
  151. Hershey H.P., Barker R.F., Idler K.B. et al. // Nucl. Acid. Res. -1985.-V. 13, № 23.-P. 8543.
  152. Hoffman P.D., Batschauer A., Hays J.B. PHH1, a novel gene from Arabidodsis thaliana that encodes a protein similar to plant blue light photoreceptors and microbial photolyases // Mol. Gen. Genet. 1996. — V. 253. -P. 259−265.
  153. Holdgate D.R. Plant cell, tissue and organ culture. Berlin: SpringerVerl., 1977.-P. 18−43.
  154. Ino M. Photoregulation of auxin biosinthesis and transport // Pap. Annual Meeting and Symposia. Kyoto, 1999. — P. 5.
  155. Iwasaki T., Fukuda H., Shibaoka H. Inhibition of cell division and DNA synthesis by gibberellin in isolated Zinnia mesophyll cells // Plant Cell Physiol. 1980. — V. 27, N 4. — P. 717−724.
  156. Jackson J.A., Jenkins G.I. Extension-growth responses and expression of flavonoid biosynthesis genes in the Arabidopsis hy4 mutant // Pianta. 1995. -Bd.197.-S. 233−239.
  157. Jacobs G., Allan P., Bornman C. H. Tissue culture studies on rose: Use of shoot tip explants. III. Auxin-gibberellin effects // Agroplantae. 1970. -Vol. 2, N 2. — P. 45−49.
  158. Jakubowska A., Kowalczyk S. Kwas abscysynowy percepcja I transdukcja sygnalu // Post.boil.komorki. — 2000. — V. 27, № 4. — C. 633−656.
  159. Jino M. Inhibitory action of red light on the growth of the maize mesocotyl: evaluation of the auxin hypothesis // Pianta. 1982. — V. 156. — P. 388 395.
  160. Kefeli V.J. Natural plant growth inhibitors and phytohormones. -Junk, Den Haag, 1978. 234 p.
  161. Kefeli V.l. Evolution of hormone system formation in plants // Orig. Life and Evol. Bios. 1989. V. 19. — P. 391−340.
  162. Kieber J.J. The ethylene response pathway in Arabidopsis // Annu. Rev. Plant Physiol, and Plant Mol. Biol. 1998. — V. 48. — P. 277−296.
  163. Koornneef M., Rolff E., Spruit C.J.P. Genetic control of light-inhibited hypocotyl elongation in Arabidopsis thaliana L. Heynh. // Z. Pflanzanphysiol. 1980. -V. 100. — S. 147−160.
  164. Kogl F., Haagen Smit A.J. Uber die Chemie des WuchsstoffsProc // Kon. Ned. Akad. Wet. 1931. — V. 34. — P. 1411−1416.
  165. Kohler K.H., Dorfler M., Goring H. The influense of light on the cytokinin content of Amarantus seedlings // Biol. Plant. 1980. — V. 22, № 2. — P. 128−134.
  166. Kohler K.H. Coaction of light and phytogormones // Abstr. Symp. «Light and Hormone Interaction in Plants». Humboldt Univ., 1985. — P. 82.
  167. Kozai T. Photoautotrophic micropropogation // In vitro cell. Dev. Biology. 1991. — V. 27. — P. 47−51.
  168. Krekule J., Seidliva F. Signals in plant development. Niderlands: SPB Acad. Publ., 1989. — 300 p.
  169. M. (). Function of cytokinins // Phil. Trans. R. Soc. Lond. -1978. V. B 84. — P. 449−457.
  170. Lang A. Gibberellins: Structure and metabolism // Ann. Rev. Plant Physiol. 1970.-V. 21. P. 537−570.
  171. Leong N.V., Goodchild D.J., Anderson J.M. Effect of light quality on the composition, function and structure of photosynthetic thylacoid membranes of Asplenium astralasicum (Sm) Hook // Plant Physiol. 1985. — V. 78. — P. 561−567.
  172. Leong T.Y., Anderson J.M. Light quality and irradiance adaptation of the composition and function of Pea thylakoid membranes // Biochim. Biophys. Acta. 1986. -V. 850. — P. 57−62.
  173. Letham D.S., Goodwin P.B., Higgins T.J.V Phytohormones and related compounds: A comprehensive treatise. Vol. I. — Elsevier, North Holland, Amsterdam, 1978. — 154 p.
  174. R., Beauchensne G. //C.r. Acad. Sci. Paris. 1969. — V. 269.-P. 1528−1531.
  175. Lichtenthaler H., Buschmann C., Rahmsdorf U. The imporyanse of blue light for the development of sun-type chloroplasts // Blue light syndrome. -Heidelberg: Springer-Verlag, 1980. P. 485−497.
  176. Lieberman M. Biosinthesis and action of ethylene // Ann. Rev. Plant Physiol. 1979.-V. 30.-P. 533−591.
  177. Lin C., Robertson D.E., Ahmad M., Raibekas A.A., Jorns M.S., Dutton P.L., Cashmore A.R. Association of the flavin adenine-dinucleotide with the Arabidopsis blue light receptor CRY 1 // Science. 1995. — V. 269. — P. 968 970.
  178. Machackova I., Josef E., Krekule J., Malbeck J. Photoperiodic control of cytokinin levels and transport // In: 17th International Conference on Plant Growth Substances. Brno: Published by Mendel University of Agriculture and Forestry, 2001. — P. 157.
  179. Milborrow B. The chemistry and physiology of abscisic acid. Ann. Rev. Plant Physiol. 1974. -V. 25. -P. 195−224.
  180. Mimuro M. Possibility for carotenoids as a blue- light receptor // Pap. Annual Meeting and Symposia. Kyoto, 1999. — P. 7.
  181. Mohr H., Drumm-Herrel H. // In: Plants and day-Ligrt spectrum. -Berlin: Springer-Verlag, 1981. P. 424—441.
  182. Moore T. C. Biochemistry and Physiology of Plant Hormones. New York: Springer-Verlag New York Inc., 1989. — 330 p.
  183. Morard Ph., Henry M. Optimization of the mineral composition of in vitro culture media // J. Plant Nutr. 1998. -V. 21, № 8. — P. 1565−1576.
  184. Mortensen L., Stromme E. Effects of light quality on some greenhouse crops. Scientia Hort. — 1987. -V. 33. — P. 27−36.
  185. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. 1962. — V.15, № 3. -P.473−497.
  186. Neumann K.H. Pflanzliche Zell- und Gewebekulturen. Stuttgart-Ulmer., 1995. — S. 129.
  187. Noe N., Eccher T., Del Signore E., Montoldi A. Growth and proliferation in vitro of Vaccinium corymbosum under different irradiance and radiation spectral composition // Biologia Plantarum. 1998. — V. 42, № 2. — P. 161−167.
  188. Panizza M., Lercari B., Tognoni F. Axillary bud proliferation from mode explants of lavandin: effects of light quality and quantity // G. Bot. Ital. -1989.-V. 123, № 2.-P. 141.
  189. M.W., Hendricks S.B., Borthwick H.A., Scully N.J. // Science. 1945. — V. 102. — P. 152.
  190. Pech J. C., Latche A., Austruy M., Fallot J. Croissance in vitro de tissus et de suspensions cellulaires de pomme // Bull. Soc. Bot. France. 1975. -V. 122, N5/6.-P. 183−194.
  191. Phillips J.D.J. Apical Dorminance. // Ann. Rev. Plant Physiol. -1975.-V. 20.-P. 341−367.
  192. Phillips R., Dodds J. H. Rapid differentiation of tracheary elements in cultured explants of Jerusalem artichoke // Planta. 1977. — Bd. 135, H. 2. — S. 207−212.
  193. Pilet P.E. Proc. 9th Int. Conf. Plant Growth Regulating Substances, Plant Growth Regulation. -Berlin-Heidelberg: Springer-Verlag, 1977. -P. 45.
  194. Pinker J., Zoglauer R., Hofmann B., Goring H. Action of light and auxin on the formation of adventitious roots and callus of birch shoot tips // Abstr. Simp. «Light and Hormone Interection in Plants». B.: Humbold Universitat, 1985.-P. 124.
  195. L. // Plant Physiol. 1973. — V. 51. — P. 203−211.
  196. Qual P.H. Phytochrome genes and their expression. In: Photomorphogenesis in plants. Kendrick R.E., Kronenberg G. H. M. — Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, 1994. P. 71−104.
  197. E., Sodding H., Nuernberg E.S. // Planta. 1963. — V. 59, № 6. — P. 965−974.
  198. Reid D.M., Clements J.B., Carr DJ. Red light inducation of gibberellin synthesis in leaves //Nature. 1968. V. 217. — P. 580−582.
  199. Richter G. Blue light effects in Biological systems. Heidelberg: Springer-Verlag, 1984. — 253 p.
  200. Richter G., Dannhauer I., Kaldemhoff R., Ottersbach N. Blue light effects on gene expression in plant-cell cultures // Progress in plant cellular and molecular biology. Amsterdam: Kluwer Academic Publishers, 1990. — V. 9. — P. 366−372.
  201. Rucker W. Kombinierter Einfluss von Indole-sigsaure, Gibberellin und Benzylaminopurin anf Kallus- und Orsrandifferenzierung an Blattexplantaten von Digitalis purpurea //Z. Pflanzenphysiol. 1982. -Bd. 107, H. 2. — S. 141−151.
  202. Sachs T, Thimann K.V. Amer. // J. Bot. 1967. — V. 54. — P. 136 144.
  203. Schlicmann W. Zum konzert der reversiblen konjugation bei phytohormonen // Naturwissenschaften. 1991. — Bd. 78. — S. 392−401.
  204. Seibert M., Wetherbee P.J., Job D.D. The effects of light intensity and spectral quality on growth and shoot initiation in tobacco callus // Physioi. Plant. -1975.-V. 56.-P. 130−139.
  205. Sembder G., Schneider G., Schreiber K. Metoden zur Pflanzenhormonanalyse. Jena: Gustav Fischer Verl., 1988. — 296 S.
  206. Simmonds D., Setterfield G., Brown D. L. Organization of microtubules in dividing and elongating cells of Vicia hajastana Grossh. in suspension culture // Eur. J. Cell. Biol. 1983. — Vol. 32, N 1. — P. 54−66.
  207. Singh B. D., Thomas E. T., Harvey B. L. Effects of gibberellic acid on cell suspension cultures of higher plants // Indian J. Exp. Biol. 1974. — V. 12, N 3.-P. 213−215.
  208. Skoog P., Miller C. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues cultured in vitro // Symp. Soc. Exp. Biol. 1957. — V. 11.-P. 118−131.
  209. Smith H. Photochrome and photomorphogenesis. McGraw-Hill, Book Co, 1975.-310 p.
  210. Smith H. Lighl quality, photoreception and plant strategy // Ann. Rev. Plant Physiol. 1982.-V. 33.-P. 481.
  211. Su W.P., Howwell S.H. The effects of cytokinin and light on hypocotyls elongation in Arabidopsis seedlings are independent and additive // Plant Physiol. 1995.-V. 108.-P. 1423−1430.
  212. A.O., Bonnett H.T. // Plant Physiol. 1967. — V. 42. — P. 762 771.
  213. Tao J., Zhan Y., You X., Yang Ch., Liu Y. // J. North-East Forest. Univ. 1998. — V. 26, № 6. — P. 6−9.
  214. Thimmapaiah S., Shirly R. In vitro regeneration of cashew (Anacardium occidentale L.) // Indian J. Exp. Biol. 1999. — V. 37, № 4. — P. 384 390.
  215. Toyomasu T., Kawaide H., Kaneta T. et al. Phytochrome regulates gibberellin biosynthesis during germination of photoblastic lettuce (cv. Grand Rapids) seeds // RIKEN Rev. 1999. — № 21. — C. 57.
  216. Turnbull C. G., Raymond M. A., Dodd I.C., Morris S.E. Rapid increases in cytokinin concentration in lateral buds of chickpea (Cicer arietinum L.) // Planta. 1997. -Bd. 202, H. 3. — S. 271−276.
  217. R.D., Quail P.H. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1882. — V. 79, № 17.-P. 5272.
  218. Vinterhalter D., Grubisic D., Vinterhalter B., Konjevic R. Light controlled root elongation in vitro cultures of Dracaena frugrans Ker-Gawl. // Planta Cell Tissue and Organ Cult. 1990. — V. 22, № 1. — P. 1−16.
  219. Weaver R.J. Plant growth substances in agriculture. Freeman, San Francisco, 1972. — 265 p.
  220. Wegler R. Chemie der Pflanzenschutz- und Schadlingsbekampfungsmittel. Springer, Berlin, 1977. — Bd. IV. — S. 220.133
  221. Weiss J.S., Jaffe M.F. Photocnhancement by blue light of organogenesis in tobacco pith cultures // Physioi. Plant. 1969. — V. 22. — P. 171 176.
  222. Whitelam G.C., Devlin P.F. Ligth signaling in Arabidopsis // Plant Physiol. Biochem.- 1998.-V. 36, № 1−2.-P. 125−133.
  223. Wild A., Holzapfel A. The effect of blue and red light on content of chlorophyll, cytochrom f. reducing sugars, proleins and NRA during growth of Sinapis alba II The blue light syndrome. Berlin: Springer-Verlag, 1980. — P. 444.
  224. Wolton D.C. Biochemistry and physiology of abscisic acid // Ann. Rev. Plant Physiol. 1980. — V. 31. — P. 453−489.
  225. Yne de Desjardins J., Lamarre M., Gosselin A. Photosintesis and transpiration of in vitro cultured asparagines plantlets // Sci. Hort (Neth.). 1992. -V. 42, № 1−2.-P. 9−16.
Заполнить форму текущей работой

Сдать сессию!