Бакалавр
Дипломные и курсовые на заказ

Участие стволовых клеток в репаративной и физиологической регенерации почки

Диссертация: Участие стволовых клеток в репаративной и физиологической регенерации почки
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Проблема хронического гломерулонефрита занимает одно из центральных место в нефрологии. Актуальность изучения патогенеза этого заболевания обусловлена его высокой распространённостью (гломерулонефрит занимает 3−4 место среди всех заболеваний почек), поражением в основном работоспособной части населения, тяжестью прогноза (неизбежное развитие хронической почечной недостаточности). Кроме того… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ВВЕДЕНИЕ
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Нефрон, образующие его клетки и их маркёры
      • 2. 1. 1. Эндотелиальные клетки клубочка
      • 2. 1. 2. Подоциты
      • 2. 1. 3. Мезангиальные клетки
      • 2. 1. 4. Канальцевый эпителий
    • 2. 2. Репаративная регенерация
      • 2. 2. 1. Клеточная пролиферация и методы её изучения
    • 2. 3. Репаративная регенерация почки
    • 2. 4. Участие неповреждённых клеток почки в репарации нефрона при остром повреждении
      • 2. 4. 1. Регенерация клубочка при остром гломерулонефрите
        • 2. 4. 1. 1. Острый гломерулонефрит
        • 2. 4. 1. 2. Репаративный ответ клеток клубочка на модели острого гломерулонефрита
      • 2. 4. 2. Регенерация эпителия канальцев при остром повреждении
        • 2. 4. 2. 1. Острая почечная недостаточность
        • 2. 4. 2. 2. Регенеративный ответ на модели острой почечной недостаточности
    • 2. 5. Участие неповреждённых клеток почки в репарации нефрона при хроническом повреждении
      • 2. 5. 1. Хронический гломерулонефрит
      • 2. 5. 2. Хроническое повреждение клубочка
        • 2. 5. 2. 1. Изменения эндотелиальных клеток
        • 2. 5. 2. 2. Изменения мезангиальных клеток
      • 2. 5. 3. Хроническое повреждение эпителия канальцев
        • 2. 5. 3. 1. Причины повреждения канальцев
    • 2. 6. Резидентные стволовые клетки и их участие в регенераторном процессе
      • 2. 6. 1. Свойства резидентных стволовых клеток
      • 2. 6. 2. Резидентная стволовая клетка почки
        • 2. 6. 2. 1. Локализация, выделение и участие в регенерации резидентных стволовых клеток почки
    • 2. 7. Стволовые клетки костного мозга и их участие в регенерации почки
      • 2. 7. 1. Гемопоэтическая стволовая клетка
        • 2. 7. 1. 1. Источники получения гемопоэтических стволовых клеток
      • 2. 7. 2. Мезенхимальная стволовая клетка
      • 2. 7. 3. Участие клеток костного мозга в репаративной регенерации почки
        • 2. 7. 3. 1. Гемопоэтические стволовые клетки в восстановлении канальцевого эпителия после повреждения
        • 2. 7. 3. 2. Мезенхимальные стволовые клетки в восстановлении каналыдевого эпителия после повреждения
        • 2. 7. 3. 3. Стволовые клетки костного мозга в восстановлении клеток клубочка
  • 3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Объекты исследования
      • 3. 1. 1. Характеристика нефробиоптатов
        • 3. 1. 1. 1. Морфологическое исследование нефробиоптатов больных хроническим гломерулонефритом
      • 3. 1. 2. Лабораторные животные
        • 3. 1. 2. 1. Забор пуповинной крови
        • 3. 1. 2. 2. Выделение мононуклеаров путем седиментации в градиенте плотности фиколла
        • 3. 1. 2. 3. Подсчёт количества мононуклеаров и определение их жизнеспособности
        • 3. 1. 2. 4. Забор материала и приготовление гистологических срезов тканей
    • 3. 2. Гистологические и иммуногистохимические методы исследования
      • 3. 2. 1. Депарафинирование и регидратация парафиновых срезов
      • 3. 2. 2. Окрашивание по Ван-Гизону
      • 3. 2. 3. Окрашивание парафиновых срезов биоптатов почек больных хроническим гломерулонефритом антителами к PCNA и а-ГМА
      • 3. 2. 4. Окрашивание парафиновых срезов биоптатов почек больных хроническим гломерулонефритом антителами к
  • CD34 и CD
    • 3. 2. 5. Окрашивание парафиновых срезов почки крысы антителами kHLA-ABC
    • 3. 3. Оценка выраженности экспрессии CD34 и CD клетками клубочка
  • 4. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 4. 1. Морфологический анализ биоптатов почек больных хроническим гломерулонефритом
      • 4. 1. 1. Экспрессия CD34 и CD31 в нефробиоптатах больных хроническим гломерулонефритом
      • 4. 1. 2. Морфологические проявления гломерулонефрита
        • 4. 1. 2. 1. Изучение присутствия CD34(+)/CD31(-)-клеток в клубочках при различных значениях индекса воспалительной активности гломерулонефрита
        • 4. 1. 2. 2. Изучение присутствия CD34(+)/CD31(-)-KneTOK в клубочках при различных значениях индекса склероза клубочков
        • 4. 1. 2. 3. Изучение изменения индекса склероза клубочков при различных значениях индекса воспалительной активности гломерулонефрита
        • 4. 1. 2. 4. Изучение изменения уровня мочевины крови больных хроническим гломерулонефритом при различных значениях индекса воспалительной активности заболевания
      • 4. 1. 3. Изучение пролиферативной активности и миофибробластической трансдифференцировки клеток клубочков у больных хроническим гломерулонефритом
        • 4. 1. 3. 1. Экспрессия PCNA в нефробиоптатах больных хроническим гломерулонефритом
        • 4. 1. 3. 2. Изучение пролиферативной активности клеток клубочков при различных значениях индекса воспалительной активности гломерулонефрита
        • 4. 1. 3. 3. Изучение пролиферативной активности клеток клубочков при различных значениях индекса склероза клубочков
        • 4. 1. 3. 4. Экспрессия а-ГМА в нефробиоптатах больных хроническим гломерулонефритом
        • 4. 1. 4. 4. Изучение миофибробластической трансдифференцировки клеток клубочков при различных значениях индекса воспалительной активности гломерулонефрита
        • 4. 1. 3. 5. Изучение миофибробластической трансдифференцировки клеток клубочков при различных значениях индекса склероза клубочков
      • 4. 1. 4. Сопоставление появления CD34(+)/CD31(-)-KrieTOK в клубочках с пролиферацией и миофибробластической трансдифференцировкой клеток клубочков
    • 4. 2. Изучение миграции и распределения трансплантированных мононуклеаров пуповинной крови человека в интакных почках крыс

Участие стволовых клеток в репаративной и физиологической регенерации почки (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

АКТУАЛЬНОСТЬ.

Изучение регенерации органов и тканей остаётся одним из самых значимых и актуальных направлений в современной медицине и биологии. В первую очередь, это обусловлено потребностью практической медицины, так как для разработки новых методов лечения просто необходимы фундаментальные знания относительно активации и взаимодействия различных клеточных типов органа в норме и при патологии.

В рамках этого вопроса недостаточно изученными остаются клеточные основы патогенеза различных заболеваний почки, в частности, хронического гломерулонефрита.

Проблема хронического гломерулонефрита занимает одно из центральных место в нефрологии. Актуальность изучения патогенеза этого заболевания обусловлена его высокой распространённостью (гломерулонефрит занимает 3−4 место среди всех заболеваний почек [21]), поражением в основном работоспособной части населения, тяжестью прогноза (неизбежное развитие хронической почечной недостаточности [7]). Кроме того, крайне проблематичной остаётся терапия хронического гломерулонефрита, ведь, как известно, гемодиализ является лишь методом симптоматической терапии, направленным на снижение уровня азотистых оснований в крови, а трансплантация почки по ряду причин часто невозможна [40]. Существующая патогенетическая медикаментозная терапия бывает недостаточно эффективна и сопряжена с многочисленными побочными эффектами. В связи с этим необходимым является поиск новых, патогенетически обоснованных и более эффективных методов лечения. Одним из таких методов может стать клеточная терапия с использованием стволовых клеток.

На сегодняшний день идея регенеративной терапии различных заболеваний с использованием стволовых клеток, а также с применением специфических факторов роста, стимулирующих выход стволовых клеток в периферический кровоток, начала претворяться в жизнь [2]. В связи с этим исследователями ведётся интенсивное изучение участия стволовых клеток в регенерации органов и тканей и возможности применения этих клеток для патогенетической терапии различных заболеваний [47, 135, 143, 198, 225, 227], в том числе заболеваний почек [239]. Большую помощь в изучение поведения стволовых клеток оказывают методы иммуногистохимии [9], так как использующиеся специфические маркёры, позволяют не только идентифицировать гемопоэтические стволовые клетки, но и выявлять пути их миграции и дифференцировки.

Существует мнение, что, подобно другим органам, репаративная регенерация почки происходит за счёт трёх основных источников [124]: миграции и пролиферации неповреждённых дифференцированных клетокактивации и дифференцировки резидентных стволовых клетокпривлечения и дифференцировки циркулирующих стволовых клеток из костного мозга. Процесс миграции и пролиферации неповреждённых клеток самой почки является основным и наиболее изученным в регенерации этого органа [77, 84, 176]. Однако эти полученные фундаментальные знания мало помогли в разработке эффективной патогенетической терапии хронического гломерулонефрита. Относительно локализации региональных стволовых клеток в почке, активации и участия их в регенерации органа при повреждении нет однозначного мнения [132, 133, 134, 140, 153, 154, 191, 193, 218], что также препятствует разработке новых терапевтических подходов при лечении заболеваний почки. Поэтому огромные надежды возлагаются на использование экзогенных стволовых клеток [124], а особенно — гемопоэтических стволовых клеток, для терапии хронического гломерулонефрита.

В настоящее время существует большое количество работ, свидетельствующих об участии циркулирующих клеток костного мозга в восстановление канальцевого эпителия после острого повреждения [57, 60, 113, 186].

Вместе с этим, значительно хуже в отношении вклада стволовых клеток в регенерацию нефрона изучена модель хронического гломерулонефрита. Так, открытым остаётся вопрос об активации костномозгового компартмента и участии собственных стволовых клеток в регенерации почки при хроническом гломерулонефрите. В тоже время, именно эти данные крайне необходимы для определения целесообразности проведения трансплантации стволовых клеток для лечения гломерулонефрита.

Кроме того, прежде чем вводить экзогенные гемопоэтические стволовые клетки с целью лечения, необходимо знать, как они распределяются в неповреждённом органе.

В последнее время, как в эксперименте, так и в клинике, в качестве источника гемопоэтических стволовых клеток наибольшее значение приобретает пуповинная кровь [41, 51, 71, 228]. Это связано как с абсолютной безопасностью забора стволовых клеток [228], и возможностью длительного их хранения [228], так и с рядом качественных свойств самих стволовых клеток. Как известно, гемопоэтические стволовые клетки, выделенные из пуповинной крови, обладают значительно более высокой пролиферативной и клоногенной активностью [51, 71] и меньшей иммуногенностью по сравнению с клетками, полученными из взрослого организма [168].

В связи с этим, для корректного сопоставления результатов трансплантации стволовых клеток, полученных из разных источников, а также для оценки возможности применения стволовых клеток пуповинной крови для терапии заболеваний почки необходимо предварительно изучить, что происходит с этими клетками после трансплантации интактным животным: мигрируют ли трансплантированные клетки в почку, если да, то в какие её отделы и каковы пути их дальнейшей дифференцировки.

Таким образом, изучение поведения различных клеточных типов в регенерации почки при хроническом гломерулонефрите позволит установить участие собственных гемопоэтических стволовых клеток в этом процессе и определить возможность и перспективы трансплантации гемопоэтических стволовых клеток пуповинной крови для терапии заболеваний почки.

ЦЕЛЬ РАБОТЫ: изучить возможность участия гемопоэтических СБ34(+)-клеток в процессах регенерации нефронов у больных хроническим гломерулонефритом, а также хоуминг и дифференцировку мононуклеаров пуповинной крови человека в интактных почках крыс. ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ:

1. На основании иммуногистохимического анализа установить, участвуют ли гемопоэтические С034(+)-клетки в регенерации нефронов больных хроническим гломерулонефритом;

2. Изучить зависимость появления С034(+)-клеток в клубочках почки от степени развития морфологических проявлений гломерулонефрита (воспалительной активности заболевания и выраженности склероза клубочков);

3. Проанализировать пролиферативную активность и миофибробласическую. трансдифференцировку клеток клубочков и их изменения в зависимости от степени развития морфологических проявлений гломерулонефрита;

4. Провести сравнительный анализ участия гемопоэтических CD34(+)клеток и резидентных клеток клубочка (пролиферирующих клеток, миофибробластов) в регенерации клубочка при хроническом гломерулонефрите;

5. На основании иммуногистохимического исследования изучить миграцию, распределение и пути дифференцировки трансплантировании ых мононуклеаров пуповинной крови человека в почке здоровой крысы.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА В работе получены новые данные об участии собственных гемопоэтических СВ34(+)-клеток в регенерации клубочков почки при хроническом гломерулонефрите у человека. Так, впервые иммуногистохимическими методами показано, что в клубочках больных хроническим гломерулонефритом появляются С034(+)-клетки, не экспрессирующие маркёр эндотелия CD31, что свидетельствует об их принадлежности к гемопоэтическим стволовым клеткам. Было установлено, что появление этих клеток непосредственно зависит от выраженности развития морфологических проявлений гломерулонефрита. Приоритетными следует признать данные по анализу участия гемопоэтических стволовых клеток в регенерации почки в сопоставлении с изменением пролиферативной активности и миофибробластической трансдифференцировки резидентных клеток клубочков в зависимости от воспалительной активности заболевания и степени выраженности склероза клубочков. На основании полученных данных впервые было установлено, что чаще всего CD34(+)/CD31(-)-ioieTKH обнаруживаются в тех случаях, когда индекс воспалительной активности не превышает умереных значений, а индекс склероза почечных клубочков минимален. Несомненной новизной обладают данные о том, что эта стадия должна рассматриваться как переломный момент в течение гломерулонефрита когда восстановление клубочковой структуры и функции почек ещё может произойти. Возможно, это связано с тем, что при данных значениях воспаления и склероза вклад гемопоэтических стволовых клеток в процесс регенерации максимален, а склеротические изменения в клубочках пока незначительны.

Впервые показано, что мононуклеары пуповинной крови человека, трансплантированные в кровоток интактных крыс, мигрируют в почку и встраиваются в эпителиальную выстилку дистальных канальцев. Поскольку при повреждении клубочка СБ34(+)-клетки обнаруживаются в эндотелии клубочков, а в отсутствие такового — среди эпителия дистальных канальцев, мы выдвинули гипотезу, что эпителиальная выстилка дистальных канальцев может служить «нишей» для стволовых клеток почки.

ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ И ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ.

Результаты диссертационного исследования расширяют и углубляют наши представления о клеточных механизмах регенерации почки человека. Так, нами установлено, что при хроническом гломерулонефрите восстановление нефрона происходит не только за счёт эндогенного резерва органа, но и гемопоэтических CD34(+)/CD31(-)-KneTOK. Совокупность данных, полученных на основании иммуногистохимического исследования, позволила выявить критический период в развитии гломерулонефрита, что важно для прогноза заболевания. Им является индекс воспалительной активности гломерулонефрита равный 1−4 баллам и индекс склероза клубочков равный 1−2 баллам. Именно в этот период заболевания в клубочках чаще определялись СВ34(+)-клетки, не экспрессиругощие CD31. Полученные данные имеют большое практическое значение, так как могут быть использованы для диагностики и определения прогноза течения заболевания у больных хроническим гломерулонефритом.

Проведённый эксперимент способствовал обнаружению новых фактов о способности мононуклеаров пуповинной крови человека, введённых в кровоток здоровой крысы, мигрировать в почку и заселять её. На основании того, что клетки человека обнаружены среди эпителия дистальных канальцев, было сделано предположение, что именно дистальные канальцы могут служить «нишей» прогениторных клеток почки.

Безусловно, полученные результаты о появлении С034(+)-клеток в нефроне могут быть использованы для дальнейшего изучения регенерации этого органа в норме и при повреждении, в разработке методов лечения хронических заболеваний почки с использованием стволовых клеток, а также будут полезны в поисках региональной стволовой клетки почки. Кроме того, результаты исследования должны быть использованы в учебном процессе при подготовке специалистов медико-биологического профиля.

ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ 1. Наличие CD34(+) / CD31(-) — клеток в клубочках почек больных хроническим гломерулонефритом является подтверждением гипотезы об участии прогениторных кроветворных клеток в регенерации органов, в частности почки, и это участие максимально при минимальной и умеренной воспалительной активности заболевания и минимальном склерозе клубочков. При более выраженном воспалении и склерозе регенерация происходит за счёт пролиферации и миофибробластической трансдифференцировки клеток клубочка.

2.Мононуклеары пуповинной крови человека, трансплантированные в системный кровоток крыс, мигрируют в неповреждённую почку и встраиваются в эпителиальную выстилку дистальных канальцев нефрона. ВНЕДРЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ.

Результаты проведённого исследования внедрены в учебный процесс на кафедре нормальной анатомии и гистологии ГОУ ВПО «Казанский ГМУ Росздрава», включены в основной курс дополнительной образовательной программы «Молекулярная и клеточная медицина» ГОУ ВПО «Казанский ГМУ Росздрава». Иммуногистохимическая оценка к маркёрам CD31, CD34, PCNA, а-ГМА при комплексном исследовании хронического гломерулонефрита внедрена в практику ГМУ «Детская республиканская клиническая больница» (г. Казань).

АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ Основные результаты диссертационной работы доложены на 77-й Всероссийской студенческой научной конференции, посвященной 125-летию со дня рождения профессора М. Н. Чебоксарова (Казань, 2003) — XIII Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Молодые учёные в медицине» (Казань, 2008), XIV Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Молодые учёные в медицине» (Казань, 2009) и XIV Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Молодые учёные в медицине» (Казань, 2010).

СТРУКТУРА И ОБЪЁМ ДИССЕРТАЦИИ Диссертация изложена на 129 страницах машинописи и состоит из оглавления, введения, литературного обзора, описания материалов и методов исследования, результатов собственных исследований и их обсуждения, заключения, выводов и списка цитируемой литературы. Диссертация иллюстрирована 6 таблицами и 20 рисунками.

Список использованных источников

включает 239 наименований, из которых 40 отечественных и 199 зарубежных.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

Несмотря на большое количество исследований и кажущуюся хорошую изученность процессов регенерации для многих органов и тканей [22, 23], знаний о клеточных механизмах регенераторного ответа явно недостаточно. Это является одной из причин, препятствующих разработке новых методов лечения и, как следствие, существованию большого количества заболеваний, лечение которых крайне затруднительно, а не редко и, вообще, невозможно. Одним из таких органов является почка.

Трудность изучения процессов регенерации почки обусловлено сложной цитоархитектоникой этого органа, включающего большое количество клеточных типов [46]. Мы в своей работе остановимся на тех из них, которые принимают непосредственное участие в патогенезе хронического гломерулонефрита.

6. Выводы.

1. Гемопоэтические CD34(+)-клетки участвуют в регенерации клубочков почки при хроническом гломерулонефрите, и это участие зависит от выраженности морфологических проявлений заболевания (индекса воспалительной активности и индекса склероза клубочков);

2. Клетки с фенотипом CD34(+)/CD31(-) значительно чаще встречаются в нефробиоптатах с индексом воспалительной активности гломерулонефрита не превышающим 4 баллов.

3. С ростом индекса склероза клубочков почки уменьшается процент нефробиоптатов с наличием CD34(+)/CD31 (-)-клеток в клубочках. При склерозе 7 и более баллов гемопоэтические СВ34(+)-клетки в клубочках не обнаруживаются.

4. Усиление воспалительной активности гломерулонефрита более 4 баллов и склероза более 2 баллов характеризуется увеличением пролиферативной активности и миофибробластической трансдифференцировкой клеток клубочков. При высоких значениях индекса склероза процент нефробиоптатов с повышенной пролиферативной активностью и миофибробластической трансдифференцировкой клеток клубочков максимален.

5. Мононуклеары пуповинной крови человека, трансплантированные в организм здоровой крысы, мигрируют в почку и обнаруживаются среди эпителиальных клеток дистальных канальцев. Это позволяет предположить, что дистальные канальца служат «нишей» стволовых клеток почки.

6. Расположение гемопоэтических С034(+)-клеток в нефроне зависит от состояния ткани почки. Так, в норме эти клетки обнаруживаются среди эпителиальной выстилки канальцев, в то время как при гломерулонефрите CD34(+)/CD31 (-)-клетки заселяют клубочки почки.

5.

Заключение

.

Конец 20-го — начало 21-го веков ознаменовались интенсивным развитием нового раздела медицины — регенеративной медицины. Одна из её областей — трансплантация стволовых клеток — становиться всё более востребованной для лечения различных, считавшихся ранее неизлечимыми заболеваний. Огромные надежды возлагаются на стволовые клетки и в современной нефрологии, где очень актуальной в течение многих лет остаётся проблема хронического гломерулонефрита (ХГН).

ХГН характеризуется высокой распространённостью, поражением в основном лиц молодого и среднего возраста и неизбежным развитием нефросклероза и хронической почечной недостаточности [7, 21]. Кроме того, крайне проблематичной остаётся лечение данного заболевания. Так, существующая медикаментозная терапия часто мало эффективна и сопряжена с многочисленными побочными эффектами, гемодиализ является лишь методом паллиативной терапии, направленный на снижение уровня азотистых оснований в крови, а трансплантация почки по ряду причин часто невозможна [40]. В связи с этим очень актуален поиск новых, патогенетически обоснованных и более эффективных методов лечения, одним из которых может стать клеточная терапия с использованием стволовых клеток. Прежде чем разрабатывать тактику лечения конкретной почечной патологии, необходимо понять, принимают ли собственные гемопоэтические стволовые клетки периферической крови участие в восстановлении органа. Ответ на этот вопрос позволят оценить целесообразность трансплантации стволовых клеток при заболеваниях почек, а в дальнейшем позволит определить момент заболевания, когда эффективнее всего её проводить.

Кроме того, исследования по участию стволовых клеток в восстановлении почки при различных заболеваниях в основном проведены в экспериментах на животных. Конечно, эти данные необходимы, но они не могут быть полностью экстраполированы на человека. Поэтому для разработки новых методов лечения крайне важно проводить изучение процессов репарации в почке больных людей.

В тоже время, если планируется трансплантация стволовых клеток с целью лечения заболеваний почек, сначала необходимо изучить миграцию и распределение этих клеток в неповреждённом органе. Поэтому целью нашего исследования стало изучение участия собственных стволовых клеток в восстановлении почечных клубочков при ХГН у человека, а также изучение распределения фракции мононуклеаров пуповинной крови человека в неповреждённых почках после трансплантации этих клеток крысам.

Пуповинная кровь человека была выбрана не случайно, ведь в настоящее время интерес к пуповинной крови, как источнику стволовых клеток, постоянно растёт. Это связано не только с минимальным риском для здоровья донора, но и с рядом качественных и количественных характеристик получаемой фракции клеток, выгодно отличающих их от клеток, полученных из других источников [51, 71, 168, 228]. Кроме того, естественной меткой введённых клеток служил лейкоцитарный антиген человека (HLA-ABC), не экспрессируемый клетками крыс, что освобождает от необходимости метить клетки перед трансплантацией.

Относительно участия стволовых клеток в процессах репаративной регенерации почек существует большое количество работ, но основной акцент обычно делается на изучении острой почечной недостаточности [57, 113, 148, 186], в то время как хроническим процессам уделяется гораздо меньше внимания. И действительно, в условиях острого повреждения, когда регенерация протекает за счёт активной пролиферации клеток собственного резерва, очень важно изучать резидентные стволовые клетки и медиаторы, активирующие их к дифференцировке и восстановлению повреждённых структур. В условиях же хронического повреждения, когда пул эндогенных клеток истощён, единственной надеждой на сохранение органа являются мигрирующие из кровотока стволовые клетки (принадлежащие собственному организму или трансплантированные).

Для того, чтобы ответить на вопрос о возможности участия гемопоэтических стволовых клеток в регенерации клубочков, мы проводили иммуногистохимическое исследование с антителами против CD31 (маркёр эндотелиальных клеток) [171, 211] и CD34 (маркёр эндотелиальных клеток и клеток-предшественниц гемопоэза) [64, 68, 91, 172, 188] серийных нефробиоптатов больных различными клинико-морфологическими формами ГН. Сравнительный анализ экспрессии изучаемых маркёров клетками клубочков выявил, что у трети больных экспрессия CD34 преобладает над CD31, т. е. в клубочках обнаруживались клетки с фенотипом CD34(+)/CD31(-), которые расценивались нами, как гемопоэтические С034(+)-клетки. Для того чтобы понять, от чего это зависит появление этих клеток к клубочках, мы изучали зависимость наличия CD34(+)/CD31 (-)-клеток в почечных клубочках от выраженности морфологических проявлений ГН, оцениваемую индексом воспалительной активности заболевания и индексом склероза клубочков. Также сопоставляли участие в регенерации клубочков этих клеток с активацией более изученных путей регенерации — пролиферацией и миофибробластической трансдифференцировкой клеток клубочков.

В результате было установлено, что значительно чаще CD34(+)/CD31(-)-клетки обнаруживаются в почечных клубочках биоптатов с минимальными и умеренными значениями индекса воспалительной активности ГН (1−4 балла) и минимальными значениями индекса склероза клубочков (1−2 балла). Дальнейшее нарастание воспалительных изменений в почке и усиление склеротических процессов в клубочках сопровождалось существенным снижением вклада гемопоэтических CD34(+)-kлеток в регенерацию клубочков. В тоже время число нефробиоптатов с пролиферирующими клетками и миофибробластами в клубочках нарастало по мере усиления воспаления и склероза и становилось максимальным при средних и высоких значениях воспалительной активности ГН (более 4 баллов) и высоких значениях клубочкового склероза (7 и более баллов). На основании этого мы предположили, что активация стволового компартмента и активация пролиферации и миофибробластической трансдифференцировки клеток клубочков — это два разнонаправленных механизма почечной регенерации. По всей вероятности, появление гемопоэтических С034(+)-клеток в клубочках больных ГН необходимо для восстановления эндотелиальной выстилки капилляров, т. е. участие этих клеток в регенерации направляет её по пути реституции. В условиях хронического повреждения этого оказывается недостаточно. Единственными клетками, способными заполнить образовавшиеся пустоты, являются мезангиальные клетки, которые активно пролиферируют, трансдифференцируются в миофибробласты и синтезируют молекулы нефизиологического матрикса. Всё это ведёт к неизбежному развитию склероза клубочков и хронической почечной недостаточности, т. е. процесс регенерации протекает по пути субституции.

Таким образом, стадия ГН, когда индекс воспалительной активности составляет от 1 до 4 баллов, а индекс склероза клубочков равен 1−2 баллам — это тот морфологически благоприятный момент в течение заболевания, когда высока вероятность того, что в результате регенерации может произойти восстановление нормальной структуры и функции органа. Возможно, это связано с присутствием CD34(+)/CD31(-)-ioieTOK и минимальными склеротическими изменениями клубочков. Другими словами, именно в этот момент решается, что станет исходом регенерации — восстановление структуры и функции почки или развитие нефросклероза.

Полученные результаты позволяют ответить на ряд практических вопросов. Мы считаем, что для трансплантации лучше всего применять собственные гемопоэтические С034(+)-клетки, полученные из периферической крови самого больного, т.к. это позволяет избежать развития реакции «трансплантата против хозяина». Местом введения клеток могут служить почечные артерии. Что же касается момента трансплантации, то с одной стороны, введённые при минимальных и умеренных значениях индекса воспаления и при минимальном склерозе СВ34(+)-клетки создадут дополнительный регенераторный резерв уже имеющимся в клубочках CD34(+)/CD31(-)-KneTKaM. С другой стороны, трансплантация ГСК при изначально высоких значениях склероза почки, возможно, приведёт к улучшению структуры почки, подобно тому, как это происходило с печенью при лечении больных с алкогольным циррозом [33]. Окончательный ответ на этот вопрос позволят дать клинические испытания.

Для изучения хоуминга и заселения стволовыми клетками интактных почек мы трансплантировали фракцию мононуклеаров пуповинной крови человека (обогащенную гемопоэтическими стволовыми клетками) в кровоток здоровых крыс и изучали миграцию и распределение введённых клеток по экспрессии специфического маркера клеток человека HLA-ABC.

Нами было показано, что мононуклеары пуповинной крови человека мигрируют в здоровую почку и встраиваются в эпителиальную выстилку дистальных канальцев.

Тот факт, что гемопоэтические С034(+)-клетки при ГН обнаруживаются в клубочках, а при отсутствии повреждения — в канальцах, по-видимому, связан с тем, что стволовые клетки, попав в здоровый орган, где в данный момент в них нет необходимости, сохраняются в нём в качестве «резерва». В органах стволовые клетки располагаются на специальных «нишах» [145]. Относительно локализации «ниши» в почке нет единого мнения [132, 133,134, 140, 153, 154, 191, 193, 218]. На основании результатов нашего исследования мы предполагаем, что именно дистальные извитые канальцы могут служить такой «нишей» .

Подводя итог всего нашего исследования, мы пришли к заключению, что гемопоэтические СЭ34(+)-клетки участвуют в процессах регенерации почки, как при повреждении, так и в норме. Причём, распределение этих клеток в нефроне напрямую зависит от состояния органа. Так, при ГН гемопоэтические СБ34(+)-клетки обнаруживаются в почечных клубочках. Кроме того, появление этих клеток в клубочке непосредственно зависит от степени морфологических проявлений ГН. В неповреждённой же почке ГСК располагаются среди эпителиальной выстилки дистальных канальцев, и, по всей вероятности, служат дополнительным резервом для регенерации органа.

Таким образом, полученные нами данные позволили по-новому взглянуть на физиологическое обновление почки и восстановление её после повреждения, а также позволяют говорить о целесообразности дальнейшего изучения данной проблемы.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Л.И. Морфологическая диагностика болезней желудка и кишечника / Л. И. Аруин, Л. Л. Капуллер, В. А. Исаков. М.: Триада-Х, 1998. — 496 с.
  2. Биологические основы и перспективы терапии стволовыми клетками / Е. Б. Владимирская и др. М.: ИД МЕДПРАКТИКА-М, 2005. — 392 с.
  3. И .Я. «Фибробласт» — специализированная клетка или функциональное состояние клеток мезенхимного происхождения? / И. Я. Бозо, Р. В. Деев, Г. П. Пинаев. //-Цитология. -2010. Т. 52, № 2. — С. 99−108.
  4. Л.Ю. Субпопуляции трансплантируемых стволовых кроветворных клеток /Л.Ю. Гривцова, Н. Н. Тупицын //Гематология гемопоэза. 2006. — Т. 3.1. С. 24−42.
  5. В.М. Острая почечная недостаточность / В. М. Ермоленко // Нефрология: Руководство для врачей / Под ред. И. Е. Тареевой. М.: Медицина, 2000.-Гл. 38.-С. 580−595.
  6. В.М. Хроническая почечная недостаточность / В. М. Ермоленко // Нефрология: Руководство для врачей / Под ред. И. Е. Тареевой. М.: Медицина, 2000.-Гл. 39.-С. 596−657.
  7. Н.Н. Некоторые механизмы формирования тубулоинтерстициального компонента при хронических заболеванияхпочек Электронный доступ. / Н. Н. Картамышева, О. В. Чумакова //
  8. Нефрология и диализ. 2001. — Т. З, № 3. Режим доступа: http://www.nephro.ru/magazine/, свободный.
  9. А.П. Современные технологии морфологических исследований/ А. П. Киясов. — Казань: КГМУ, 2001. (Методическое пособие для студентов, аспирантов и врачей-патологов). — 38 с.
  10. Ключевые проблемы гломерулонефрита / В. В. Серов и др. // Тер. архив. -1992.-№ 6.-С. 5−10.
  11. А.И. Гистохимия/А.И.Кононский.-Киев:Вища Школа, 1976.-280с.
  12. Г. А. Курс патологогистологической техники / Г. А. Меркулов. — Л.: Медгиз, 1969. 424 с.
  13. Д. Биохимия. Химические реакции в живой клетке: в 3 т. // Д. Мецлер. М.: Мир, 1980. — 3 Т. — 488 с.
  14. Ю.В. Механизмы мочеобразования / Ю. В. Наточин // Нефрология: Руководство для врачей/Под ред. И. Е. Тареевой. М.: Медицина, 2000. — Гл.2. -С. 24−48.
  15. Е.М. Экспериментальные модели хронических заболеваний почек / Е. М. Пальцева // Клиническая нефрология. 2009. — № 2. — С. 37−42.
  16. Дж. Введение в иммуногистохимию: современные методы и проблемы / Дж. Полак, С. Ван Норден. -М.: Мир, 1987. 185 с.
  17. Прогрессирование хронического гломерулонефрита: клинико-морфологические взаимосвязи Электронный доступ. / Н. Н. Картамышева [и др.] // Нефрология и диализ. 2003. — Т. 5, № 4. — Режим доступа: http://www.nephro.ru/magazine/, свободный.
  18. Прогрессирование хронического гломерулонефрита связано с развитием ишемии почечного тубулоинтерстиция / М. Ю. Швецов и др. // Терапевтический архив. — 2009. № 8. — С. 14.
  19. И.А. Роль мононуклеаров в поражении нефрона у больных хроническим гломерулонефритом. Сообщение I. / И. А. Ракитянская, С. И. Рябов // Нефрология. 1997. — Т.1, № 2. — С. 45−52.
  20. С.И. Нефрология: Руководство для врачей / С. И. Рябов. СПб.: СпецЛит, 2000. — 672 с.
  21. Д.С. Очерки истории общей патологии / Д. С. Саркисов. М.: Медицина, 1988.-448 с.
  22. Д.С. Регенерация и её клиническое значение / Д. С. Саркизов. — М.: Медицина, 1970. 284 с.
  23. В.В. Гистологическая техника / В. В. Семченко, С. А. Барашкова, В .И. Ноздрин Омск: Орёл, 2006. — 272 с.
  24. В.В. Иммунопатология почек / Серов В. В., Варшавский В. А., В. А. Куприяновой М.: Медицина, 1983. — 176 с.
  25. В.В. Новые данные о клинико-морфологической гетерогенности хронического гломерулонефрита / В. В. Серов // Вестн. РАМН. 1995. — № 5. -С. 43−47.
  26. В.В. Функциональная морфология почек / В. В. Серов // Нефрология: Руководство для врачей / Под ред. И. Е. Тареевой. М.: Медицина, 2000. — Гл. 1. -С. 12−23.
  27. В.В. Что назвать гломерулонефритом: спорные вопросы классификации/В .В. Серов, В.А. Варшавский//Арх. Пат. 1987. -№ 1- С.67−75.
  28. В.В., Варшавский В. А. Морфология гломерулонефрита / Нефрология. Руководство для врачей (под ред. Тареевой И.Е.).-М.: Медицина-2000.1. С. 211−224.
  29. Т.С. Кроветворные стволовые клетки участвуют врегенерации почки при гломерулонефрите/Т.С. Сметанникова, А.С. Хайруллов// Морфологические ведомости (приложение) № 1−2. — 2004 — С. 95.
  30. Стволовые гемопоэтические клетки в крови онкологических больных: экспрессия CD34 и колониеобразование / Л. Ю. Андреева и др. // Гематология и трансфузиология. 1999. — Т. 44, № 4. — С. 3−6.
  31. Е.М. Гломерулонефриты: Общие вопросы. Клиника / Е. М. Тареев // Нефрология: Руководство для врачей / Под ред. И. Е. Тареевой. М.: Медицина, 2000.-Гл. 9.-С. 188−205.
  32. Трансплантация аутогенных гемопоэтических стволовых клеток больнымхроническими гепатитами / А. П. Киясов и др. // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2008. — Т. З, № 1. — С. 70−75.
  33. М.В. Современные методы иммуноцитохимии и гистохимии /М.В. Угрюмов // Итоги науки и техники ВИНИТИ, серия «Морфология». -1991.-Т. 15. С. 115.
  34. Участие кроветворных стволовых клеток в регенерации почки при хроническом гломерулонефрите / Т. С. Сметанникова и др. // «Нефрология. -2006.-№ 1.-Р. 45−49.
  35. А.С. 11. Морфо-функциональные критерии оценки активности и прогрессирования гломерулонефрита автореф. дис.»." канд. мед. наук / А.С. Хайруллов- Казанский госуд.мед.унив. Казань, 1991. — 20 с.
  36. Ю.С. Общая цитология / Ю. С. Ченцов. Издательство московского университета, 1984. 352 с.
  37. Чиж А. С. Нефрология в терапевтической практике / А. С. Чиж. Минск: Вышэйская школа, 1998. 557 с.
  38. Е. М. Механизмы прогрессирования гломерулонефрита / Шилов // Нефрология: Руководство для врачей // Е. М. Под ред. И. Е. Тареевой.
  39. М.: Медицина, 2000. Гл. 9. — С. 224−239.
  40. В.И. Трансплантация почки / В. И. Шумакова, Я. Г. Мойсюк, Н. А
  41. Томилина // Нефрология: Руководство для врачей / Под ред. И. Е. Тареевой. -М.: Медицина, 2000. Гл. 40. — С. 658−682.
  42. A clinically useful source of transplantable hematopoietic stem/progenitor cells. Human umbilical cord blood / H.E. Broxmeyer et al. // Int J Cell Cloning. 1990. -Vol. 8.-P. 76−91.
  43. A role for podocytes to counteract capillary wall distention / W. Kriz et al. // Kidney Int. 1994. — Vol. 9. — P. 369−375.
  44. Abboud H.E. Resident glomerular cells in glomerular injury: mesangial cells / H.E. Abboud//Semin Nephrol. 1991.-Vol. 11.-P. 304−310.
  45. Activation-dependent changes in human platelet PECAM-1: phosphorylation, cytoskeletal association, and surface membrane redistribution / P.J. Newman et al. // J Cell Biol. 1992. — Vol. 119. — P. 239−246.
  46. Administered mesenchymal stem cells protect against ischemic acute renal failure through differentiation-independent mechanisms / F. Togel et al. // Am J Physiol Renal Physiol. 2005. — Vol. 289. — P. 29 -30.
  47. Al-Awqati Q. Stem cells in the kidney / Q. Al-Awqati, J.A. Oliver // Kidney Int. -2002.-Vol. 61. -P. 387−395.
  48. Almeida-Porada G./Bone marrow stem cells and liver regeneration//G.Almeida-Porada, E.D. Zanjani, C.D. Porada//Exp Hematol-2010. Vol.38, № 7. — P. 574−580.
  49. Anderson D.J. Can stem cells cross lineage boundaries? / D.J. Anderson, F.H. Gage, I.L.Weissman // Nat Med. 2001. — Vol. 7. — P. 393−395.
  50. Apoptosis in the repair process of experimental proliferative glomerulonephritis / A. Shimizu et al. // Kidney Int. 1995. — Vol. 47, № 1. — P. 114−121.
  51. Asanuma K. The role of podocytes in glomerular pathobiology / K. Asanuma, P. Mundel. // Clin Exp Nephrol. 2003. — Vol. 7, № 4. — P. 255−259.
  52. Ballen K.K. New trend in umbilical cord blood transplantation / K.K. Ballen // Blood. 2005. — Vol. 105. — P. 3786−3792.
  53. Basile D.P. Expression of bsl-2 and bax in regenerating rat renal tubules following ischemic injury / D.P. Basile, H. Liapis, M.R. Hammerman // Am J Physiol. 1997. — Vol. 272. — P. 640−670.
  54. Bone marrow cells contribute to regeneration of damaged glomerular endothelial cells / K. Ikarashi et al. // Kidney International. 2005. — Vol. 67. — P. 1925−1933.
  55. Bone marrow cells regenerate infarcted myocardium / D. Orlic et al. // Nature. -2001.-Vol. 410.-P. 701−705.
  56. Bone marrow contributes to renal parenchymal turnover and regeneration / R. Poulsom et al. / J Pathol. 2001. — Vol. 195, № 2. — C. 229−235.
  57. Bone marrow is a reservoir of repopulating mesangial cells during glomerular remodeling / T. Ito et al. // J Am Soc Nephrol. Vol. 12. — 2001. — P. 2625−2635.
  58. Bone marrow stem cells contribute to repair of the ischemically injured renal tubule / S. Kale et al. // J Clin Investig. 2003. — Vol. 112. — P. 42−49.
  59. Bone marrow-derived cells contribute to glomerular endothelial repair in experimental glomerulonephritis / M.B. Rookmaaker et al. // Am J of Pathology. -2003.-V. 163.-P. 553−562.
  60. Bone marrow-derived stem cells initiate pancreatic regeneration/ D. Hess et al.// Nat Biotechnol. 2003. — Vol. 21. — P. 763 — 770.
  61. Bone marrow-derived cells mobilized by granulocyte-colony stimulating factor facilitate vascular regeneration in mouse kidney after ischemia/reperfusion injury/S. Akihama et al.// Tohoku J Exp Med. 2007. — Vol. 213, № 4. — P.341−349.
  62. Bonnet D. Haematopoietic stem cells / D. Bonnet // J Pathol. 2002. — Vol.197, № 4. — P. 430−440.
  63. Bonventre J.V. Dedifferentiation and proliferation of surviving epithelial cells in acute renal failure / J.V. Bonventre // J Am Soc Nephrol. 2003. — Vol. 14, Suppl 1. -P. S55-S61.
  64. Boukhalfa G. Relationship between alpha-smooth actin expression and fibrotic changes in human kidney / G. Bouhalfa // Exp. Nephrol. 1996. — Vol.4, № 4.1. P. 241−247.
  65. Burn T.C. The human CD34 hematopoietic stem cell antigen promoter and a 3' enhancer direct hematopoietic expression in tissue culture / T.C. Burn, A.B. Satterthwaite, D.G. Tenen // Blood. 1992. — Vol.80, № 12. — P.3051 — 3059.
  66. Burrow C.R. A putative Wilms tumor-secreted grown factor activity required for primary culture of human nephroblasts / C.R. Burrow, P.D. Wilson // Proc Nalt Acad Sci USA. 1993. — Vol. 90. — P. 6066−6070.
  67. Burton C. The role of proteinuria in the progression of chronic renal failure / C. Burton, K.P. Harris // Am J Kidney D. 1996. — Vol. 27. — P. 765−775.
  68. Buttinger E.P. TGF-b signaling in renal disease / E.P. Buttinger, M. Bitzer // J Am Soc Nephrol. 2002. — Vol. 13. — P. 2600−2610.
  69. CD34: structure, biology, and clinical utility / D.S. Krause et al. // Blood.1996.-Vol. 87, № l.-P. 1−13.
  70. Characterization of renal interstitial fibroblast-specific protein l/S100A4-positive cells in healthy and inflamed rodent kidneys / M.L. Hir et al. // Histochemistry and Cell Biology. 2005. — Vol. 123, № 4−5. — P.335−346.
  71. Chen H. Reg ulation of tensin-promoted cell migration by its focal adhesion binding and Src homology domain 2 / H. Chen, S.H. Lo // Biochem J. 2003. — Vol. 370.-P. 1039−1045.
  72. Cairo M.S. Placental and/or umbilical cord blood: an alternative source of hematopoietic stem cells for transplantation / M.S. Cairo, J.E. Wagner // Blood.1997. Vol. 90, № 12. — P. 4665−4678.
  73. Congenital nephrotic syndrome in mice lacking CD2-associated protein/N.Y. Shih et al. // Science. 1999. — Vol. 286. — P. 312−315.
  74. Contractile cells of the kidney in primary glomerular disorders: An immunohistochemical study using an anti-alpha-smooth muscle actin monoclonal antibody/B.R. Macpherson et al. //Hum. Pathol. 1993. — Vol.24, № 7. -P.710−716.
  75. Cuppage F.E. Cell cycle studies in the regenerating rat nephron following injury with mercuric chloride / F.E. Cuppage, M. Chiga, A. Tate // Lab Invest. 1972. -Vol. 26.-P. 122−126.
  76. Cytokinses and grown factors in renal disease / I.L. Noronha et al. // Nephrol. Dial. Transplant. 1995. — Vol. 10. — P. 775 — 786
  77. Daley G. Realistic prospects for stem cell therapeutics / G. Daley, M. Goodel, E. Snyder // Hemotology. 2003. — P. 398−418.
  78. Direct isolation of human central nervous system stem cells / N. Uchida et al. // Proc Natl Acad Sci USA.- 2000. Vol. 97. — P. 14 720−14 725.
  79. Dissociation of mesangial cell migration and proliferation in experimental glomerulonephritis/L.A.Haseley et al.//Kidney Int.-1999.-Vol.56, № 3.-P. 964−972.
  80. Dressier G.R. The cellular basis of kidney development / G.R. Dressier // Annu Rev Cell Dev Biol. 2006. — Vol. 22. — P. 509−529.
  81. Duffield J.S. Kidney tubular epithelium is restored without replacement with bone marrow-derived cells during repair after ischemic injury / J.S. Duffield,
  82. J.V. Bonventre // Kidney Int. 2005. — Vol. 68, № 5. — P. 1956−1961.
  83. Dystrophin expression in the mdx mouse restored by stem cells transplantation / E. Gussoni et al. // Nature. 1999. — Vol. 401. — P. 390 — 394.
  84. Eddy A.A. Renal expression of genes that promote interstirial inflammation and fibrosis in rats with protein-overload proteinuria / A.A. Eddy, C.M. Giachelli // Kidney Int. 1995.-Vol. 47.-P. 1546−1557.
  85. Effects of antigen retrieval by microwave heating in formalin-fixed tissue sections on a broad panel of antibodies / R. Von Wasielewski et al. // Histochem. -1994.-Vol. 102.-P. 165−172.
  86. El-Nahas A.M. Plasticityof kidney cells: role in kidney remodeling and scarring / A.M. El-Nahas // Kidney Int. 2003. — Vol. 64. — P. 1553−1563.
  87. Enhanced expression of «muscle-specific» actin in glomerulonephritis /
  88. C.E. Alpers et al. // Kidney Int. 1992. — Vol. 41. — P. 1134−1142.
  89. Enhancement of neovascularization with cord blood CD 133+ cell-derived endothelial progenitor cell transplantation / C. Yang et al. // Thromb Haemost. -2004.-Vol. 91, № 6.-P. 1202−1212.
  90. Erica L. Plasticity of marrow-derived stem cells / L. Erica, C. Li, D.S. Krause // Blood. 2003. — Vol. 102, № 10. — P. 3483−3493.
  91. Expression of cyclin Dl, Ki-67 and PCNA in non-small cell lung cancer: prognostic significance and comparison with p53 and bcl-2 / V.N. Nguen et al. // Acta Histochem. 2000. -Vol. 102. — P.323−338.
  92. Expression of embryonic fibronectin isoform EIIIA parallels alpha-smooth muscle actin in maturing and diseased kidney. / V.L. Barnes et al.// J Histochen Cytochem. 1999. — Vol. 47, № 60. — P. 787−798.
  93. Expression of smooth muscle cell phenotype by rat mesangial cells in immune complex nephritis. Alpha-smooth muscle actin is a marker of mesangial cell proliferation / RJ. Johnson et al. // J Clin Invest. 1991. — Vol. 87. — P. 847−858.
  94. Expression of the CD34 gene in vascular endothelial cells / L. Fina et al. // Blood. 1990. — Vol. 75. — P. 2417−2426.
  95. Extracellular matrix deposition and cell proliferation in a model of chronic glomerulonephritis in the rat / S. Harendza et al. // Nephrol Dial Transplant. 1999. — Vol. 14, № 12. — P. 2873−2879.
  96. Extraglomerular origin of the mesangial cell after injury. A new role of the juxtaglomerular apparatus / C. Hugo et al. // Clin Invest. 1997.-Vol. 100.1. P. 786 -794.
  97. Farquhar M.G. Glomerular permeability I, Feritin transfer across the glomerular capillary wall / M.G. Farquhar, S.L. Wissig, G.E. Palade // J Exp Med. 1961. -Vol. 113.-P. 47−66.
  98. Farquhar M.G. Glomerular permeability II, Feritin transfer across the glomerular capillary wall in nephritic rats / M.G. Farquhar, G.E. Palade // J Exp Med. 1961. -Vol. 114.-P. 699−716.
  99. Fat is a component of glomerular slit diaphragms /Т. Inoue et al. // Kidney Int. -2001.-Vol. 59.-P. 1003−1012.
  100. Fibbe W.E. Mesenchymal stem cells. A potential source for skeletal repair / W.E. Fibbe // Annals of the rheumatic diseases. 2002. — Vol. 61. — P. 29−31.
  101. Fine L.G. Progressive renal disease: the chronic hypoxia hypothesis / L.G. Fine, C. Orphanides, J.T. Norman // Kidney Int Supple. 1998. — Vol. 65. — P. S74-S78.
  102. From marrow to brain: expression of neuronal phenotypes in adult mice / T.R. Brazelton et al. // Science. 2000. — Vol. 279. — P. 1775 — 1779.
  103. Functional expression of HGF and HGF receptor/c-met in adult human mesenchymal stem cells suggests a role in cell mobilization, tissue repair, and woundhealing / S. Neuss et al. // Stem Cells. 2004. — Vol. 22. — P. 405−414.
  104. Fusion of bone-marrow-derived cells with Purkinje neurons, cardiomyocytes and hepatocytes / M. Alvarez-Dolado et al. // Nature. 2003. — Vol. 425.1. P. 968−973.
  105. Gage F.H. Mammalian neural stem cells / F.H. Gage // Science. 2000. — Vol. 287.-P. 1433−1438.
  106. Gluckman E. Cord blood banking and transplant in Europe. Eurocord /
  107. E.Gluckman, V. Rocha, С. Chastang // Vox Sang. 1998. — Vol. 74, Suppl 2. -P. S95-S101.
  108. Guo J.K. Bone marrow transplantation can attenuate the progression of mesangial sclerosis / J.K. Guo, A. Schedl, D.S. Krause // Stem cells. 2006.1. Vol. 24, № 2. -P. 406−415.
  109. Gurner A.S. The origin of la-antigen expressing cells in the rat kidney / A.S. Gurner, J. Smith, V. Cattelle//Amer J Pathol. 1987. -Vol.127, № 2.-P.342−348.
  110. Hassan H.T. Adult bone-marrow stem cells and their potential in medicine / H.T. Hassan, M. El-Sheemy / J R Soc Med. 2004. — Vol. 97, № 10. — P. 465−471.
  111. HawleyR.G. Hematopoietic stem cells/R.G. Hawley, A. Ramezani, T.S.Hawley// Methods Enzymol. 2006. — Vol. 419.-P. 149−179.
  112. Hawley T.S. Methods in Molecular Biology: Flow Cytometry Protocols / T.S. Hawley, R.G. Hawley, N.J. Totowa-. edited by T.S. Hawley, 2nd ed -Humana Press Inc, 2004. 263 p.
  113. Haynesworth S.E. Cell surface antigens on human marrow-derived mesenchymal cells are detected by monoclonal antibodies / S.E. Haynesworth,
  114. M.A. Barber, I.A. Caplan // Bone. 1992. — Vol. 13. — P. 69−80.
  115. Hematopoietic origin of glomerular mesangial cells / M. Masuya et al. // Blood. -2003. Vol.101, № 6. — P. 2215−2218.
  116. Hematopoietic stem cells contribute to the regeneration of renal tubules after renal ischemia-reperfusion injury in mice / F. Lin et al. // J Am Soc Nephrol. -2003.-Vol. 14.-P. 1188−1199.
  117. Hematopoietic stem cells differentiate into vascular cells that participate in the pathogenesis of atherosclerosis / M. Sata et al. // Nat Med. 2002. — Vol. 8, № 4. -P. 403−409.
  118. Herzog E.L. Plasticity of marrow-derived stem cells / E.L. Herzog, L. Chai, D.S. Krause // Blood. 2003. — Vol. 102, № 10. — P. 3483−3493.
  119. High levels of interleukin 10 production in vivo are associated with tolerance in SCID patients transplanted with HLA mismatched hematopoietic stem cells /
  120. R. Bacchetta et al. // J Exp Med. 1994. — Vol. 179. — P. 493−502.
  121. Holthofer H. The glomerular mesangium: studies of its developmental origin and markers in vivo and in vitro / H. Holthofer, K. Sainio, A. Miettinen // APMIS. -1995.-Vol. 103.-P. 354−366.
  122. Human renal tubular cells as a cytokine source: PDGF-b, GM-SCF and IL-6 mRNA expression in vitro / J. Frank et al. // Exp Nephrol. 1993. — Vol. 1, № 1. -P. 26−35.
  123. Human umbilical cord-derived endothelial progenitor cells promote growth cytokines-mediated neorevascularization in rat myocardial infarction / C.H. Huet al. // Chin Med J. 2009. — Vol. 122, № 5. — P. 548−555.
  124. Immunocytological localization of epidermal grown factor in the rat kidney after drug-induced tubular injury /D. Nonclercq et al.//Eur J Morphol. 1993. -Vol. 31, № 1−2.-P. 65−71.
  125. Immunoelectron microscopic demonstration of Thy-1 antigen on the surfaces of mesangial cells in the rat glomerulus / T. Yamamoto et al. // Nephron. 1986. -Vol. 43, № 4.-P. 293−298.
  126. Impaired recruitment of bone-marrow-derived endothelial and hematopoietic precursor cells blocks tumor angiogenesis and growth / D. Lyden et al. //Nat Med. -2001.-Vol.7,№ 11.-P. 1194−1201.
  127. In search of renal stem cells / F. Anglani et al. // J Cell Mol Med. 2004. -Vol. 8.-P. 474−487.
  128. In vitro genetic selection of renal proximal tubules / P.K. Held et al. // Mol Ther. 2006. — Vol. 13, № 1. — P. 49−58.
  129. In vivo and in vitro stem cell function of c-kit- and Sea-1-positive murine hematopoietic cells/S. Okada et al.//Blood. 1992. — Vol. 80, № 12. — P. 3044−3050.
  130. Increased synthesis of extracellular matrix in mesangial proliferative nephritis / J. Floege et al. // Kidney Int. 1991. — Vol. 40, № 3. -P. 477−488.
  131. Induction of irreversible glomerulosclerosis in the rat by repeated injections of a monoclonal anti-Thy-1.1 antibody / H. Morita et al. // Nephron. 1992. — Vol. 60, № 1. — P. 92−99.
  132. Intrarenal injection of bone marrow-derived angiogenic cells reduces endothelial injury and mesangial cell activation in experimental glomerulonephritis /
  133. H. Uchimura et al. // J Am Soc Nephrol. 2005. — Vol. 16, № 4. — P. 997−1004.
  134. Intravenous administration of human umbilical cord blood cells in a mouse model of amyotrophic lateral sclerosis: distribution, migration and differentiation/ S. Garbuzova-Davis et al.//J Hematother Stem Cell Res.- 2003.-Vol.12. P. 255−270.
  135. Ischemia- and cytokine-induced mobilization of bone marrow-derived endothelial progenitor cells for neovascularization / T. Takahashi et al. // Nat Med. 1999. — Vol. 5, № 4. — P. 434−438.
  136. Isolation and characterization of kidney-derived stem cells / S. Gupta et al. / J Am Soc Nephrol. 2006. — Vol. 17. — P. 3028−3040.
  137. Isolation and characterization of multipotent progenitor cells from the Bowman’s capsule of adult human kidneys / C. Sagrinati et al. // J Am Soc Nephrol. 2006. -Vol. 17.-P. 2443−2456.
  138. Isolation of renal progenitor cells from adult human kidney/B.Bussolati et al. // Am J Pathol. 2005. — Vol. 166. — P. 545−555.
  139. V.S. / Treatment viability of stem cells in ophthalmology//
  140. V.S. Jeganathan, M. Palanisamy // Curr Opin Ophthalmol. 2010. — Vol. 21, № 3. -P. 213−217.
  141. Johnson R.J. What mediates progressive glomerulosclerosis? The glomerular endothelium comes of age / R.J. Johnson // Am J Pathol. 1997. — Vol. 151. — P. 1179−1181.
  142. Kashgarian M. Mesangium and glomerular disease / M. Kashgarian //Lab Investig. 1984. — Vol.52, № 6. — P. 569−571.
  143. Kelman Z. PCNA: Structure, function and interaction / Z. Kelman // Oncogene. 1997. — Vol. 14. — P. 629−640.
  144. Kidney, blood, and endothelium: developmental expression of stem cell leukemia during nephrogenesis / B. Dekel et al. // Kidney Int. 2004. — Vol. 64. -P. 1162−1169.
  145. Kim D. Nephrogenic factors promote differentiation of mouse embryonic stem cells into renal epithelia / D. Kim, Dressier G.R.// J Am Soc Nephrol. 2005.1. Vol. 16.-P. 3527−3534.
  146. Klahr S. Mechanisms of progression of chronic renal damage / S. Klahr // J Nephrol. 1999. — Vol. 12, Suppl 2. — P. S53-S62.
  147. Kriz W. Progression of glomerular diseases: is the podocyte the culprit? / W. Kriz, N. Gretz, K.V. Lemley // Kidney Int. 1998. — Vol. 54. — P. 687−697.
  148. A.H. / Clinical potential of adult vascular progenitor cells.// A.H. Kumar, N.M. Caplice//Arterioscler Thromb Vase Biol.- 2010. Vol. 30,№ 6. — P. 1080−1087.
  149. Lan H.Y. Initiation and evolution of interstitial leukocytic infiltration in experimental glomerulonephritis / H.Y. Lan, D.J. Nikolic-Paterson, R.C. Atkins // Kidney Int. 1991. — Vol. 40. — P. 425−433.
  150. Lavker R.M.: Epidermal stem cells: Properties, markers and location / R.M. Lavker, T.T. Sun // Proc Natl Acad Sci USA. 2000. — Vol. 97. — P. 13 473−13 475.
  151. Lee S.H. Mechanism of elongation of primed DNA by DNA polimerase delta, proliferating cell nuclear antigen, and activator 1 / S.H. Lee, J. Hurwitz // Proc Natl Acad Sci USA. 1990. — Vol. 87. — P. 672−676.
  152. Lemischka I. The heamatopoietic stem cell and its clonal progeny: mechanisms regulating the hierarchy of primitive hematopoietic cells / I. Lemischka // Cancer Surv.- 1992.-Vol. 15.-P. 3−18.
  153. Lin F. Intrarenal cells, not bone marrow-derived cells, are the major source for regeneration in postischemic kidney / F. Lin, A. Moan, P. Igarashi // J Clin Invest. -2005.-Vol. 115, № 7.-P. 1756−1764.
  154. Little evidence for developmental plasticity of adult hematopoietic stem cells. / A.J. Wagers et al. // Science. 2002. — Vol. 297, № 5590. — P. 2256−2259.
  155. Lo S.H. Tensin / S.H. Lo // Int J Biochem Cell Biol. 2004. — Vol. 36, № 1. — P. 31−34.
  156. Macpherson B.R. Contractile cells of the kidney in primary glomerular disorders: An immunohistochemical study using an anti-alpha-smooth muscle actin monoclonal antibody / B.R. Macpherson // Hum Pathol. 1993. — Vol.24, № 7-P.710−716
  157. Maeshima A. Adult kidney tubular cell population showing phenotypic plasticity, tubulogenic capacity, and integration capability into developing kidney // A. Maeshima, H. Sakurai, S.K.Nigam // J Am Soc Nephrol. 2006. — Vol. 17.1. P. 188−198.
  158. Maeshima A. Identification of renal progenitor-like tubular cells that participate in the regeneration processes of the kidney/A. Maeshima, S. Yamashita, Y. Nojima // J Am Soc Nephrol. 2003. — Vol. 14. — P. 3138−3146.
  159. McCulloch E.A. Perspective on the properties of stem cells / E.A. McCulloch, J.E. Till//Nat Med.-2005.-Vol. 11.-P. 1026−1028.
  160. Mechanical stress reduces podocyte proliferation in vitro / A.T. Petermannet al. // Kidney Int. 2002. — Vol. 61. — P. 40−50.
  161. MeneP. Mechanism of repair after kidney injury/P. Mene, R. Polci, F. Festuccia // J Nephrol. 2003. — Vol. 16, № 2. — P. 186−195.
  162. Mene P. Mesangial cells cultures / P. Mene // J Nephrol. 2001. — Vol. 14, № 3. -P. 198−203.
  163. Mesenchymal stem cells are renotropic, helping to repair the kidney and improve function in acute renal failure / M. Morigi et al. // J Am Soc Nephrol. — 2004.-Vol. 15.-P. 1794−1804.
  164. Metanephric mesenchyme contains multipotent stem cells whose fate is restricted after induction / D. Herzlinger et al. // Development. 1992. — Vol. 114. -P. 565−572.
  165. Metcalf D. Hematopoietic stem cells: old and new / D. Metcalf // Biomed Pharmacother. -2001. Vol. 55. — P. 75−78.
  166. Mezey E. Bone marrow: a possible alternative source of cells in the adult nervous system / E. Mezey, K.J. Chandross // Eur J Pharmacol. 2000. — Vol. 405, № 1−3.-P. 297−302.
  167. Miner J.H. Renal basement membrane components / J.H.Miner // Kidney Int. -1999. Vol. 56. — P. 2016−2024.
  168. Morigi M. Mesenchymal stem cells are renotropic, helping to repair the kidney and improve function in acute renal failure / M. Morigi et al. // J Am Soc Nephrol. -2004.-Vol. 15, № 7.-P. 1794−1804.
  169. Multi-organ, multi-lineage engraftment by a single bone marrow-derived stem cell / D.S. Krause et al. // Cell. 2001. — Vol. 105, № 3. — P. 369−377.
  170. Myelomonocytic cells are sufficient for therapeutic cell fusion in liver / H. Willenbring et al. // Nat Med. 2004. — Vol. 10, № 7. — p. 744−748.
  171. Nangaku M. Mechanisms of tubulointerstitial injury in the kidney: final common pathways to end- stage renal failure / M. Nangaku //Intern Med. 2004.1. Vol. 43, № l.-P. 9−17.
  172. Navarrete C.V. Cord blood dendritic cells /C.V. Navarrete, J. Gomez, F.E.Borras // Cord blood: biology, immunology, banking, and clinical transplantation / Edited by Hal E. Broxmeyer/-AABB Press Bethesda, Maryland, 2004. Part 9. — P. 187−198.
  173. Neointimal and tubulointerstitial infiltration by recipient mesenchymal cells in chronic renal-allograft rejection / P.C. Grimm et al. // N Engl J Med. 2001. — Vol. 345.-P. 93−97.
  174. Nephrin is specifically located at the slit diaphragm of glomerular podocytes / V. Ruotsalainen et al. // Proc Natl Acad Sci USA. 1999. — Vol 96. — P. 7962−7967.
  175. Newman P.J. Switched at birth: a new family for PECAM-1. / P.J. Newman // J Clin Invest/. 1999. — Vol. l 03, № l.-P. 5−9.
  176. Nucleolin regulates gene expression in CD34-positive hematopoietic cells / E. Grinstein et al. // J Biol Chem. 2007. — Vol. 282, № 17. — P. 12 439−12 449.
  177. Ogle B.M. Biological implications of cell fusion / B.M. Ogle, M. Cascalho, J.L. Piatt // Nat Rev Mol Cell Biol. 2005. — Vol. 6, № 7. — P. 567−575.
  178. Origins and formation of microvasculature in the developing kidney/ D.R. Abrahamson et al. // Kidney Int. 1998. — Vol. 54, Suppl 67. — P. S7-S11.
  179. Optimal time for human umbilical cord blood cell transplantation in rats with myocardial infarction / Y. Xing et al. // Chin Medical Journal. 2009. — Vol. 122, № 23. — P. 2833−2839. V№ol. 122 No. 23
  180. Participation of glomerular endothelial cells in the capillary repair of glomerulonephritis / L. Iruela-Arispe et al. // Am J Pathol. 1995. — Vol. 147, № 6. -P. 1715−1727.
  181. Pathways to Recovery and Loss of Nephrons in Anti-Thy-1 Nephritis / W. Kriz et al. // J Am Soc Nephrol. 2003. — Vol. 14. — P. 1904−1926.
  182. Pavenstadt H. Cell Biology of the Glomerular Podocyte / H. Pavenstadt, W. Kriz, M. Kretzler // Physiological Reviews. 2003. — Vol.83, № 1. — P. 253−307.
  183. Peterson B. E Bone marrow a potential source of hepatic oval cells / B.E. Peterson, W.C. Bown, K.D. Patrene//Science.-1999. Vol. 284.-P. 1168−1170.
  184. Placental blood collection: Effects on Newborns / F. Bertolini et al. // Blood. -1995. Vol. 85. — P. 3361−3362.
  185. Platelet-derived growth factor (PDGF). and PDGF receptor are induced in mesangial proliferative nephritis in the rat / H. Iida et al. // Proc Natl Acad Sci U S A. 1991. — Vol. 88, № 15. — P. 6560−6564.
  186. Platelet-derived growth factor indirectly stimulates angiogenesis in vitro /N. Sato et al. // Am J Pathol. 1993. — Vol. 142, № 4. — P. — 1119−1130.
  187. Podocyte injuries exacerbate mesangial proliferative glomerulonephritis / Y. Morioka et al. // Kidney Int. 2001. — Vol. 60, № 6. — P. 2192−2204.
  188. Prevention of mesangial sclerosis by bone marrow transplantation / J.K. Guo et al. // Kidney Int. 2006. — Vol. 70. — P. 910−913.
  189. Progressive renal lesions induced by administration of monoclonal antibody1.22−3 to unilaterally nephrectomized rats / Q.L. Cheng et al. // Clin Exp Immunol. 1995.-Vol. 102, № 1. — P. l 81—185.
  190. Proliferation of bone marrow-derived cells contributes to regeneration after folic acid-induced acute tubular injury / T.C. Fang et al. // J Am Soc Nephrol. 2005. -Vol. 16.-P. 1723−1732.
  191. Purified hematopoietic stem cells can differentiate into hepatocytes in vivo / E. Lagesse et al. // Nat Med. 2000. — Vol. 6. — P. 1229−1234.
  192. Pusztaszeri M.P. Immunohistochemical expression of endothelial markers CD31, CD34, von Willebrand factor and Fli-1 in normal human tissues /
  193. M.P. Pusztaszeri, W. Seelentag, F.T. Bosman // J Histochem Cytochem. 2006. -Vol. 54, № 4.-P. 385−395.
  194. Rabkin R. Ammonium chloride alters renal tubular cell growth and protein turnover / R. Rabkin, M. Palathumpat, T. Tsao//Lab Invest. 1993. — Vol. 68, № 4.1. P. 427−438.
  195. Recovery of damaged glomerular capillary network with endothelial cell apoptosis in experimental proliferative glomerulonephritis / A. Shimizu et al. // Nephron. 1998. — Vol. 79. — P. 206−214.
  196. Regeneration of glomerular podocytes by human renal progenitors / E. Ronconi et al. // J Am Soc Nephrol. 2009. — Vol. 20, № 2. — P. 322−332.
  197. Regeneration of ischemic cardiac muscle and vascular endothelium by adult stem cells / K.A. Jackson et al. //J. Clin. Invest. 2001. — Vol. 107. — P. 1395−1402.
  198. Regenerative potential of embryonic renal multipotent progenitors in acute renal failure / E. Lazzeri et al. // J Am Soc Nephrol. 2007. — Vol. 18, № 12.1. P. 3128−3138.
  199. Remuzzi G. Understanding the nature of renal disease progression / G. Remuzzi, P. Ruggenenti, A. Benigni // Kidney Int. -1997. Vol. 51. — P. 2−15.
  200. Renal Histology Электронный ресурс. / Faculty of Medicine Histology. -Режим доступа: http://courseweb.edteched.uottawa.ca/medicine-histology/.
  201. Reversal of diabetic nephropathy in human cadaveric kidneys after transplantation into non-diabetic recipiens / G.M. Abouna et al. // Lancet. 1983. -Vol. 2.-P. 1274−1276.
  202. Role of the microvascular endothelium in progressive renal disease / D.H. Kang et al. // J Am Soc Nephrol. 2002. — Vol. 13, № 3. — P. 806−816.
  203. Roomans G.M. Tissue engineering and the use of stem/progenitor cells for airway epithelium repair / G.M. Roomans // Eur Cell Mater. 2010. — Vol. 19.1. P. 284−299.
  204. SchenaF. Cytokine network and resident renal cells in glomerular diseases / F. Schena // Nephrol Dial Transplantation. 1999. — Vol. 14. — P. 22−26.
  205. Schlondorff D. The glomerular mesangial cell: an expanding role for a specialized pericyte / D. Schlondorff// FA-SEB J. 1987. — Vol. 1. — P. 272−281.
  206. Schnabel E. The tight junction protein ZO-1 is concentrated along slit diaphragms of the glomerular epithelium/E. Schnabel, J.M. Anderson, M.G.Farquhar//
  207. J Cell Biol. 1990.-Vol. 111.-P. 1255−1263.
  208. Segal M.S. Endothelial health and diversity in the kidney / M.S. Segal,
  209. C. Baylis, R.J. Johnson // J Am Soc Nephrol. 2006. — Vol. 17, № 6. — P. 323−324.
  210. Serial transplantation reveals the stem-cell-like regenerative potential of adult mouse hepatocytes/K.Overturf et al.//Am J Pathol.-1997.- Vol. 151- P. 1273−1280.
  211. Shankland S.J. Cell-cycle control and renal disease / S.J. Shankland // Kidney Int. 1997. — Vol. 52. — P. 294−308.
  212. Skeletal muscle differentiation potential of a human adult bone marrow cells / P. Bossolasco et al. // Exptl. Cell Res. 2004. — Vol. 295, № 1. — P. 66−78.
  213. Stem cells and progenitor cells in renal disease / H. Haller et al. // Kidney Int.— 2005.-Vol. 68, № 5.-P. 1932−1936.
  214. Sterzel B.R. Cytokines and mesangial cells / B.R. Sterzel, E. Schuze-Lohoff, M. Marx // Kidney Int. 1993. — Vol. 39, Suppl. 10. — P. S26 — S31.
  215. Structural characterization of the mesangial cell type IV collagenase and enhanced expression in a model of immune complex-mediated glomerulonephritis /
  216. D.H. Lovett et al. // Am J Pathol. 1992. — Vol. 141, № 1. — P. 85−98.
  217. Svendsen C.N. Human neural stem cells: Isolation, expansion and transplantation / C.N. Svendsen, M.A. Caldwell, T. Ostenfeld // Brain Path. 1999. -Vol. 9.-P. 499−513.
  218. Switched at birth: a new family for PECAM-1 / P.J. Newman // Clin Invest. -1999.-Vol. 103, № 1.-P. 5−9.
  219. Takeda Т.A. Pathomorphological study on damage and repair process of tubuli after renal ischemia /Т.А. Takeda //Nippon-Jinzo-Gakkai-Shi. 1996. — Vol. 38,11. — P. 493−501.
  220. Tensin is expressed in glomerular mesangial cells and is related to their attachment to surrounding extracellular matrix / H. Takahara et al. // J Histochem Cytochem. 2004. — Vol. 52, № 5. — P. 683−692.
  221. The activated mesangial cell: a glomerular «myofibroblast»? / R. JJohnson et al. // J Am Soc Nephrol. 1992. — Vol.2. — P. S190-S197.
  222. The fusion of bone-marrow-derived proinsulin-expressing cells with nerve cells underlies diabetic neuropathy / T. Terashima et al. // Proc Natl Acad Sci U S A. -2005.-Vol. 102, № 35.-P. 12 525−12 530.
  223. The glomerular slit diaphragm is a modified adherens junction / J. Reiser et al. // J Am Soc Nephrol. 2000. — Vol. 11. — P. 1 -8.
  224. The potential of bone marrow-derived cells to differentiate to glomerular mesangial cells / T. Imasawa et al. // J Am Soc Nephrol. 2001. — Vol. 12. — P. 1401−1409.
  225. The renal papilla is a niche for adult kidney stem cells / J.A. Oliver et al. // Clin Invest. 2004. — Vol. 114. — P. 795−804.
  226. Till J. A direct measurement of the radiation sensitivity of normal mouse bone marrow cells /J. Till, E. McCullochZ/Radiation Research. -1961.-Vol. 14.-P.213−222.
  227. Tissue distribution of von Willebrand factor gene expression in vivo / K. Yamamoto et al. // Blood. 1998. — Vol. 92. — P. 2791−2801.
  228. Topography of focal proximal tubular necrosis after ischemia with reflow in the rat kidney / P.F. Shanley et al. // Am J Pathol. 1986. — Vol. 122. — P. 462168.
  229. Transplanted hematopoietic stem cells demonstrate impaired sarcoglycan expression after engraftment into cardiac and skeletal muscle / K.A. Lapidos et al. // J Clin Invest. 2004. — Vol. 114.-P. 1577−1585.
  230. Transplanted mesenchymal stem cells accelerate glomerular healing in experimental glomerulonephritis / U. Kunter et al. // J Am Soc Nephrol. 2006. — Vol. 17.-P. 2202−2212.
  231. Tryggvason K. How does the kidney filter plasma? / K. Tryggvason, J. Wartiovaara// Physiology. -2005. -Vol. 20.-P. 96−101.
  232. S. / Notch and Wnt signaling, physiological stimuli and postnatal myogenesis // S. Tsivitse // Int J Biol Sci. 2010. — Vol. 6, № 3. — P. 268−281.
  233. Tubular injury and regeneration in the rat kidney following acute exposure to gentamicin: a time-course study / D. Nonclercq et al. // Renal Fail. 1992. — Vol. 14.-P. 507−521.
  234. Ulicna M. Does cell therapy and tissue engineering represent a promising treatment of diabetic foot ulcers? / M. Ulicna, L. Danisovic, J. Vojtassak // Bratisl Lek Listy. 2010. — Vol.111, № 3. — P. 138−143.
  235. Umbilical cord blood banking / Ghrysler G.R. et al. // Cord blood: biology, immunology, banking, and clinical transplantation / Edited by Hal E. Broxmeyer/ -AABB Press Bethesda, Maryland, 2004. Part 11. — P. 219−257.
  236. Umbilical cord blood hematopoietic stem and repopulating cells in human clinical transplantation / H.E. Broxmeyer et al. // Blood Cells. 1991. — Vol. 17, № 3. — P. 313−329.
  237. Uremia causes endothelial progenitor cell deficiency / K. de Groot et al. / Kidney Int. 2004. — Vol.66. — P. 641−646.
  238. Urinary System Электронный ресурс. / Laboratory Atlas for the study of medical histology. Режим доступа: http://www.medicalhistology.us/, свободный.
  239. Vascular endothelial growth factor enhances glomerular capillary repair and accelerates resolution of experimentally induced glomerulonephritis / Y. Masuda et al. // Am J Pathol. 2001. Vol. 159, № 2. — P. 599−608.
  240. Verfaillie C. Stem cells: hype and reality / C. Verfaillie, M. Pera, P. Lansdorf // Hematology.-2002. Vol. l.-P. 369−391.
  241. Weissman I.L. Stem cells: units of development, units of regeneration, and units in evolution / I.L. Weissman// Cell. 2000. — Vol. 100. — P. 157−168.
  242. Wolf G. Angiotensin II: a pivotal factor in the progression of renal disease / G. Wolf// Nephrol Dial Transplant. 1990. — Vol. 14, Suppl. 1. — P. 42−44.
  243. Yamada E. The fine structure of the mouse kidney glomerulus / E. Yamada // J Biophys Biochem Cytol. 1955. — Vol. l.-P. 551−566.
  244. Yamamoto T. Quantitative and qualitative studies of antibody-induced mesangial cell damage in the rat / T. Yamamoto, C.B. Wilson / Kidney Int. 1987. -Vol. 32.-P. 514−525.
  245. Yamashita S. Involvement of renal progenitor tubular cells in epithelial-to-mesenchymal transition in fibrotic rat kidneys / S. Yamashita, A. Maeshima, Y. Nojima // J Am Soc Nephrol. 2005. — Vol. 16. — P. 2044−2051.
  246. Zubko R. Stem cell therapy for the kidney? / R. Zubko, W. Frishman // Am J Ther. 2009. — Vol.16, № 3. — P. 247−256.
Заполнить форму текущей работой

Сдать сессию!